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  • Vol. 2026, 44(3)
  • Artículo Científico

Detección de Closterovirus tristezae en limón persa mediante aprendizaje automático y drones

PorMaribel Reyes García, Remigio Anastacio Guzmán Plazola*, Reyna Isabel Rojas Martínez, Victoria Ayala Escobar, Héctor Flores Magdaleno

Recibido: 03/octubre/2025 – Publicado: 17/julio/2026
DOI: https://doi.org/10.18781/R.MEX.FIT.2510-2

Resumen Antecedentes/Objetivo. La producción de limón persa (Citrus latifolia) en México es amenazada por diversas enfermedades. Entre las principales está el virus de la tristeza de los cítricos (Closterovirus tristezae, CTV), que puede infectar plantas de manera asintomática. Esta investigación tuvo como objetivo evaluar el uso de imágenes multiespectrales adquiridas por drones y algoritmos de aprendizaje automático (Machine learning) para identificar plantas enfermas como herramienta para detección temprana y no destructiva

Materiales y Métodos. El estudio se realizó en tres campos agrícolas de Campeche: Champotón y Castamay secciones 1 y 2. Se capturaron imágenes multiespectrales (verde, rojo, borde de rojo e infrarrojo cercano), se extrajeron firmas espectrales, índices de vegetación (NDVI, GNDVI, NDRE, SIPI) y componentes principales (PCA). Se aplicaron clasificadores supervisados: Bosque Aleatorio (RF), Máxima Verosimilitud (MAXLIKE), Máquina de soporte vectorial (SVM) y Perceptrón Multicapa (MLP), en esquemas de clasificación dura y blanda.

Resultados. RF tuvo el mejor desempeño. En clasificación dura, alcanzó precisiones globales del 64 % en Champotón y Castamay Sección 1, y del 65 % en Sección 2, con detección de plantas enfermas entre 65 y 75 %. En clasificación blanda, obtuvo mejores resultados. En Champotón logró 94 % de precisión global y detectó el 79 % de las plantas enfermas. En Castamay Sección 1, 91 y 92 %, respectivamente; y en Sección 2, 99 % de precisión global y 100 % en la detección de enfermedad.

Conclusión. Random Forest mostró el comportamiento más robusto y estable en los distintos escenarios y campos analizados, tanto en clasificación dura (65 %) como en clasificación blanda (94 %), lo que confirma su capacidad para manejar relaciones no lineales y la variabilidad espectral en ambientes agrícolas reales. El uso de imágenes multiespectrales junto con algoritmos de aprendizaje automático, especialmente RF en clasificación blanda, representa una herramienta efectiva para el diagnóstico temprano de CTV en limón persa.

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Cuadro 1. Resumen estadístico de los valores espectrales por banda y clase en los tres campos evaluados en plantaciones comerciales de limón persa.
Cuadro 1. Resumen estadístico de los valores espectrales por banda y clase en los tres campos evaluados en plantaciones comerciales de limón persa.
Cuadro 2. Valores medios de las variables derivadas de las imágenes (bandas originales, componentes principales e índices de vegetación) en los tres campos analizados en plantaciones comerciales de limón persa.
Cuadro 2. Valores medios de las variables derivadas de las imágenes (bandas originales, componentes principales e índices de vegetación) en los tres campos analizados en plantaciones comerciales de limón persa.
Figura 1. Curvas de densidad espectral por banda, comparación entre plantas sanas y enfermas asociadas a <em>Closterovirus tristezae</em>, CTV en el campo Champotón, Campeche.
Figura 1. Curvas de densidad espectral por banda, comparación entre plantas sanas y enfermas asociadas a Closterovirus tristezae, CTV en el campo Champotón, Campeche.
Figura 2. Curvas de densidad espectral por banda, comparación entre plantas sanas y enfermas asociadas a <em>Closterovirus tristezae</em>, CTV en el campo Castamay Sección 1, Campeche.
Figura 2. Curvas de densidad espectral por banda, comparación entre plantas sanas y enfermas asociadas a Closterovirus tristezae, CTV en el campo Castamay Sección 1, Campeche.
Figura 3. Curvas de densidad espectral por banda, comparación entre plantas sanas y enfermas asociadas a <em>Closterovirus tristezae</em>, CTV en el campo Castamay Sección 2, Campeche.
Figura 3. Curvas de densidad espectral por banda, comparación entre plantas sanas y enfermas asociadas a Closterovirus tristezae, CTV en el campo Castamay Sección 2, Campeche.
Figura 4. Clasificación dura en los tres campos de cultivo. Campo Champotón: A1) Precisión global considerando todos los píxeles clasificados correctamente; A2) Porcentaje de distribución de píxeles por clase (plantas sanas y enfermas). Castamay Sección 1: B1) Precisión global considerando todos los píxeles clasificados correctamente; B2) Porcentaje de distribución de píxeles por clase (plantas sanas y enfermas). Castamay Sección 2: C1) Precisión global considerando todos los píxeles clasificados correctamente; C2) Porcentaje de distribución de píxeles por clase (plantas sanas y enfermas).
Figura 4. Clasificación dura en los tres campos de cultivo. Campo Champotón: A1) Precisión global considerando todos los píxeles clasificados correctamente; A2) Porcentaje de distribución de píxeles por clase (plantas sanas y enfermas). Castamay Sección 1: B1) Precisión global considerando todos los píxeles clasificados correctamente; B2) Porcentaje de distribución de píxeles por clase (plantas sanas y enfermas). Castamay Sección 2: C1) Precisión global considerando todos los píxeles clasificados correctamente; C2) Porcentaje de distribución de píxeles por clase (plantas sanas y enfermas).
Figura 5. Campo Champotón en Campeche, México con cultivo de limón persa. Clasificación blanda de los mejores resultados en las escalas de probabilidad por algoritmo. A) Imagen RGB del campo tomada con dron del cultivo de limón persa; B) Sitio de entrenamiento, datos obtenidos de los análisis de campo mediante inmunotiras; C) RF con umbral de 56 %; D) MAXLIKE con umbral de 50 %; E) SVM-RBF con umbral de 29 %.
Figura 5. Campo Champotón en Campeche, México con cultivo de limón persa. Clasificación blanda de los mejores resultados en las escalas de probabilidad por algoritmo. A) Imagen RGB del campo tomada con dron del cultivo de limón persa; B) Sitio de entrenamiento, datos obtenidos de los análisis de campo mediante inmunotiras; C) RF con umbral de 56 %; D) MAXLIKE con umbral de 50 %; E) SVM-RBF con umbral de 29 %.
Figura 6. Castamay Sección 1 en Campeche, México con cultivo de limón persa. Clasificación blanda de los mejores resultados en las escalas de probabilidad por algoritmo. A) Imagen RGB del campo tomada con dron del cultivo de limón persa; B) Sitio de entrenamiento, datos obtenidos de los análisis de campo a través de las inmunotiras; C) RF con umbral de 50 %; D) SVM-RBF con umbral de 50 %; E) SVM-LIN con umbral de 50 %; F) SVM-SIG con umbral 50 %; G) MAXLIKE con umbral de 50 %; H) SVM-POLY con umbral de 50 %.
Figura 6. Castamay Sección 1 en Campeche, México con cultivo de limón persa. Clasificación blanda de los mejores resultados en las escalas de probabilidad por algoritmo. A) Imagen RGB del campo tomada con dron del cultivo de limón persa; B) Sitio de entrenamiento, datos obtenidos de los análisis de campo a través de las inmunotiras; C) RF con umbral de 50 %; D) SVM-RBF con umbral de 50 %; E) SVM-LIN con umbral de 50 %; F) SVM-SIG con umbral 50 %; G) MAXLIKE con umbral de 50 %; H) SVM-POLY con umbral de 50 %.
Figura 7. Castamay Sección 2, en Campeche, México con cultivo de limón persa. Clasificación blanda de los mejores resultados en las escalas de probabilidad por algoritmo. A) Imagen RGB del campo tomada con dron del cultivo de limón persa; B) Sitio de entrenamiento, datos obtenidos de los análisis de campo a través de las inmunotiras; C) Resultados de Random Forest a un umbral de membresía (UM) de 50 %; D) SVM-RBF con UM de 50 %; E) SVM-SIG con UM de 50 %; F) SVM-LIN con UM de 50 %; G) MAXLIKE con UM de 50%; H) SVM-POLY con UM de 51 %.
Figura 7. Castamay Sección 2, en Campeche, México con cultivo de limón persa. Clasificación blanda de los mejores resultados en las escalas de probabilidad por algoritmo. A) Imagen RGB del campo tomada con dron del cultivo de limón persa; B) Sitio de entrenamiento, datos obtenidos de los análisis de campo a través de las inmunotiras; C) Resultados de Random Forest a un umbral de membresía (UM) de 50 %; D) SVM-RBF con UM de 50 %; E) SVM-SIG con UM de 50 %; F) SVM-LIN con UM de 50 %; G) MAXLIKE con UM de 50%; H) SVM-POLY con UM de 51 %.
  • Vol. 2026, 44(3)
  • Nota Fitopatológica

Actividad antifúngica in vitro y sensibilidad de aislados de Neopestalotiopsis rosae frente a extractos de Baccharis salicifolia y Fouquieria splendens

PorJesús Eduardo Ramírez Méndez, Meralida Bartolón Pérez, Francisco Daniel Hernández Castillo, Yisa María Ochoa Fuentes, Laura Castro Rosalez, Marco Antonio Tucuch Pérez*

Recibido: 19/enero/2026 – Publicado: 13/julio/2026
DOI: https://doi.org/10.18781/R.MEX.FIT.2601-3

Resumen Antecedentes/Objetivo. En fresa, Neopestalotiopsis rosae causa pudriciones en corona y raíz, afectando el rendimiento del cultivo. El objetivo del presente estudio fue analizar la sensibilidad de cuatro cepas N. rosae (466, 323, FREC y 372) a extractos vegetales (EVs) de Baccharis salicifolia y Fouquieria splendens, y determinar su actividad antifúngica sobre las cepas.

Desarrollo experimental. Se llevó a cabo un análisis fitoquímico mediante técnicas cualitativas. Posteriormente, la actividad antifúngica de los EVs se realizó mediante bioensayos in vitro utilizando la técnica de microdilución, con dosis de 3.9 a 2 000 mg L⁻¹ (10 dosis), determinándose las concentraciones inhibitorias al 50 y 90 % (CI₅₀-₉₀), así como un ANOVA seguido de una prueba de comparación de medias de Tukey (p ≤ 0.05). Finalmente, se evaluaron los efectos de los EVs sobre las estructuras celulares fúngicas.

Resultados. Respecto a los fitoquímicos, ambos EVs presentaron fenoles, saponinas y taninos. En la evaluación de la actividad antifúngica, los aislados 323 y FREC de N. rosae fueron los más sensibles, ya que mostraron inhibición total con ambos EVs a 250 mg L⁻¹. En contraste, los aislados 372 y 466 requirieron concentraciones mayores para lograr la inhibición completa. En particular, B. salicifolia fue más efectiva sobre las cepas 466 y 372 a 1 000 mg L⁻¹, mientras que F. splendens necesitó hasta 2 000 mg L⁻¹ para inhibir completamente a la cepa 466. En cuanto al daño estructural inducido por los EV, el aislado 323 mostró la mayor sensibilidad a partir de 250 mg L⁻¹, evidenciada por la inhibición de la germinación de conidios y alteraciones morfológicas severas, como colapso celular y deshidratación. Los aislados FREC y 372 presentaron engrosamiento micelial a 500 mg L⁻¹, mientras que el aislado 466 mostró la menor sensibilidad, sin daño estructural evidente aún a dicha concentración.

Conclusión. Los extractos de B. salicifolia y F. splendens contienen diversos fitoquímicos. En relación con los aislados de N. rosae, los aislados 323 y FREC mostraron mayor sensibilidad frente a los EVs, con porcentaje inhibición de 100 % a dosis de 250 mg L⁻¹, además de daño estructural por parte de los extractos, lo que respalda su potencial para el manejo de N. rosae. Sin embargo, se requieren estudios bajo condiciones de invernadero y campo para validar su eficacia.

Mostrar Figuras y/o Cuadros
Cuadro 1. Identificación de fitoquímicos presentes en extractos metanólicos de <em>Baccharis salicifolia</em> y <em>Fouquieria splendens</em> por métodos colorimétricos.
Cuadro 1. Identificación de fitoquímicos presentes en extractos metanólicos de Baccharis salicifolia y Fouquieria splendens por métodos colorimétricos.
Cuadro 2. Concentración de inhibición al 50 y 90 % (CI<sub>50-90</sub>) de aislados de <em>Neopestalotiopsis rosae</em> tratados con extractos de <em>Baccharis salicifolia</em> y <em>Fouquieria splendens</em>.
Cuadro 2. Concentración de inhibición al 50 y 90 % (CI50-90) de aislados de Neopestalotiopsis rosae tratados con extractos de Baccharis salicifolia y Fouquieria splendens.
Figura 1. Porcentaje de inhibición de aislados de <em>Neopestalotiopsis rosae</em> tratados con extracto de <em>Baccharis salicifolia</em>. * Los datos identificados con la misma letra son estadísticamente similares.
Figura 1. Porcentaje de inhibición de aislados de Neopestalotiopsis rosae tratados con extracto de Baccharis salicifolia. * Los datos identificados con la misma letra son estadísticamente similares.
Figura 2. Porcentaje de inhibición de aislados de <em>Neopestalotiopsis rosae</em> tratados con extracto de <em>Fouquieria splendens</em>. * Los datos identificados con la misma letra son estadísticamente similares.
Figura 2. Porcentaje de inhibición de aislados de Neopestalotiopsis rosae tratados con extracto de Fouquieria splendens. * Los datos identificados con la misma letra son estadísticamente similares.
Figura 3. Efecto del extracto de <em>Baccharis salicifolia</em> sobre las estructuras fúngicas de aislados de <em>Neopestalotiopsis rosae</em>. A1–A2: control absoluto. B1–B5: 466 (2 000, 1 000, 500, 250 y 125 mg L⁻¹); C1–C5: 323 (2 000, 1 000, 500, 250 y 125 mg L⁻¹); D1–D5: FREC (2 000, 1 000, 500, 250 y 125 mg L⁻¹); E1–E5: 372 (2 000, 1 000, 500, 250 y 125 mg L⁻¹). Las observaciones microscópicas se realizaron a 10 y 40X.
Figura 3. Efecto del extracto de Baccharis salicifolia sobre las estructuras fúngicas de aislados de Neopestalotiopsis rosae. A1–A2: control absoluto. B1–B5: 466 (2 000, 1 000, 500, 250 y 125 mg L⁻¹); C1–C5: 323 (2 000, 1 000, 500, 250 y 125 mg L⁻¹); D1–D5: FREC (2 000, 1 000, 500, 250 y 125 mg L⁻¹); E1–E5: 372 (2 000, 1 000, 500, 250 y 125 mg L⁻¹). Las observaciones microscópicas se realizaron a 10 y 40X.
Figura 4. Efecto del extracto de <em>Fouquieria splendens</em> sobre las estructuras fúngicas de aislados de <em>Neopestalotiopsis rosae</em>. A1–A2: control absoluto. B1–B5: 466 (2 000, 1 000, 500, 250 y 125 mg L⁻¹); C1–C5: 323 (2 000, 1 000, 500, 250 y 125 mg L⁻¹); D1–D5: FREC (2 000, 1 000, 500, 250 y 125 mg L⁻¹); E1–E5: 372 (2 000, 1 000, 500, 250 y 125 mg L⁻¹). Las observaciones microscópicas se realizaron a 10, 40 y 100X.
Figura 4. Efecto del extracto de Fouquieria splendens sobre las estructuras fúngicas de aislados de Neopestalotiopsis rosae. A1–A2: control absoluto. B1–B5: 466 (2 000, 1 000, 500, 250 y 125 mg L⁻¹); C1–C5: 323 (2 000, 1 000, 500, 250 y 125 mg L⁻¹); D1–D5: FREC (2 000, 1 000, 500, 250 y 125 mg L⁻¹); E1–E5: 372 (2 000, 1 000, 500, 250 y 125 mg L⁻¹). Las observaciones microscópicas se realizaron a 10, 40 y 100X.
  • Vol. 2026, 44(3)
  • Nota Fitopatológica

Primer reporte de Pseudomonas putida afectando Eryngium spp., estudio de caso en Ixtapan de la Sal, Estado de México

PorSantiago Vergara Pineda, Paola S Puga Guzmán, Daniel Mendoza Jiménez, José Antonio Cervantes Chávez*

Recibido: 09/marzo/2026 – Publicado: 22/junio/2026
DOI: https://doi.org/10.18781/R.MEX.FIT.2603-2

Resumen Antecedentes/Objetivo. Especies de plantas del género Eryngium son nativas de México, su cultivo como flor ornamental de corte es reciente, por lo que se desconocen en gran medida los patógenos que las afectan. En este sentido, un productor se dio a la tarea de innovar usando esta planta para flor cortada, enfrentándose con una enfermedad de pudrición que diezmó su cultivo en campo por lo que el objetivo de este trabajo fue aislar, identificar y caracterizar el agente causante de la pudrición blanda de Eryngium spp. en el tallo.

Desarrollo experimental. Plantas con síntomas de pudrición se recolectaron en una parcela cultivada en el municipio de Ixtapan de la Sal, Estado de México. Diez plantas con síntomas se mantuvieron en cámara húmeda, de las cuales se aisló una bacteria que se identificó con análisis bioquímicos. Para su identificación molecular, se realizó la extracción de ADN para amplificar el gen ribosomal 16S con los iniciadores 27F y 1492R. Los productos de PCR se enviaron al laboratorio de genómica avanzada del LANGEBIO del CINVESTAV Irapuato, Guanajuato. Así, mismo, se realizó los postulados de Koch en 20 plántulas de Eryngium spp. asintomáticos, donde se inocularon por punción de masa bacteriana en la base de las hojas, en la región distal del peciolo y basal de las nervaduras.

Resultados. De acuerdo al análisis bioquímico, se determinó la bacteria perteneciente al género Pseudomonas, el análisis molecular reveló que la identidad de la bacteria correspondió a Pseudomonas putida. En los Postulados de Koch, se observó el 100 % de síntomas asociadas a pudrición blanda.

Conclusión. Se identificó a Pseudomonas putida como el agente causal de la pudrición blanda en Eryngium spp. En el postulado de Koch, se confirmó su patogenicidad en plántulas de Eryngium spp. Este es el primer reporte de P. putida causando pudrición en Eryngium spp.

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Figura 1. Relación filogenética de la cepa bacteriana 1347 y especies de referencia del género <em>Pseudomonas</em>, teniendo una correlación con <em>Pseudomonas putida</em> (MF462927, PP095708). El árbol filogenético se construyó utilizando el método de Máxima Verosimilitud (Maximum Likelihood) basado en secuencias del gen 16S del DNA ribosomal. Los valores numéricos en los nodos internos representan el soporte de bootstrap a partir de 100 000 réplicas. Las cepas <em>P. brassicacearum</em> AF100322 y <em>P. alabamensis</em> PQ115154 se emplearon como grupo externo.
Figura 1. Relación filogenética de la cepa bacteriana 1347 y especies de referencia del género Pseudomonas, teniendo una correlación con Pseudomonas putida (MF462927, PP095708). El árbol filogenético se construyó utilizando el método de Máxima Verosimilitud (Maximum Likelihood) basado en secuencias del gen 16S del DNA ribosomal. Los valores numéricos en los nodos internos representan el soporte de bootstrap a partir de 100 000 réplicas. Las cepas P. brassicacearum AF100322 y P. alabamensis PQ115154 se emplearon como grupo externo.
Figura 2. Fases de desarrollo de la pudrición blanda en <em>Eryngium</em> sp. en cultivo en campo. A) Haz de la hoja mostrando necrosis en nervaduras centrales; B) Envés de la misma hoja con necrosis severa; C) Peciolos de las hojas con estrías necróticas; D) Marchitez y muerte de hojas; E) Marchitez de la planta completa.
Figura 2. Fases de desarrollo de la pudrición blanda en Eryngium sp. en cultivo en campo. A) Haz de la hoja mostrando necrosis en nervaduras centrales; B) Envés de la misma hoja con necrosis severa; C) Peciolos de las hojas con estrías necróticas; D) Marchitez y muerte de hojas; E) Marchitez de la planta completa.
Figura 3. Pudrición blanda en el tallo y raíz principal de <em>Eryngium</em> spp. asociadas a bacterias.
Figura 3. Pudrición blanda en el tallo y raíz principal de Eryngium spp. asociadas a bacterias.
Figura 4. Postulados de Koch en plántula de <em>Eryngium</em> spp. inoculadas con cepa bacteriana 1347. A) Lesiones acuosas en el sitio de inoculación por punción en hoja con proceso infectivo al día siguiente; B) Progresión de severidad al segundo día; C) Planta muerta al décimo día; D) Planta control.
Figura 4. Postulados de Koch en plántula de Eryngium spp. inoculadas con cepa bacteriana 1347. A) Lesiones acuosas en el sitio de inoculación por punción en hoja con proceso infectivo al día siguiente; B) Progresión de severidad al segundo día; C) Planta muerta al décimo día; D) Planta control.
  • Vol. 2026, 44(2)
  • Artículo Científico

Efecto in vitro e in planta del silicio y fosfitos en control de Fusarium oxysporum f. sp. lycopersici causante de la marchitez en tomate

PorMagda Rocío Gómez Marroquín*, Sandra L Carmona, Diana Burbano David, Andrea del Pilar Villarreal, Mauricio Soto Suárez, Adriana González Almario

Recibido: 15/junio/2025 – Publicado: 29/abril/2026
DOI: https://doi.org/10.18781/R.MEX.FIT.2401-3

Resumen Antecedentes/Objetivo. Las sustancias bioactivas como fosfitos y silicio representan una alternativa promisoria para el manejo de la marchitez vascular del tomate, debido a su potencial para inhibir el crecimiento del patógeno e inducir mecanismos de defensa en la planta. El objetivo de este estudio fue evaluar el efecto de tres fuentes de fosfitos y una fuente de silicio sobre el aislamiento Fol59 de Fusarium oxysporum f. sp. lycopersici raza 2 mediante ensayos in vitro e in planta.

Materiales y Métodos. En condiciones in vitro, se determinó el porcentaje de inhibición del crecimiento radial (PICR) del aislamiento Fol59 de Fusarium oxysporum f. sp. lycopersici raza 2 en medio PDA suplementado con cada sustancia bioactiva en concentraciones entre 10 y 20 000 ppm, bajo un diseño completamente al azar (4 × 9), con cuatro tratamientos y nueve concentraciones, cinco réplicas técnicas y tres biológicas. En condiciones in planta, se evaluó el Área Bajo la Curva del Progreso de la Enfermedad (ABCPE) y el porcentaje de eficacia mediante un diseño completamente al azar (4 × 2), con cuatro tratamientos y dos concentraciones, considerando cuatro condiciones experimentales: control, control inoculado, tratamientos sin inoculación y tratamientos inoculados. Se utilizaron 20 unidades experimentales por tratamiento y tres réplicas biológicas.

Resultados. A los siete días, las sustancias bioactivas redujeron el crecimiento radial del hongo entre 70 y 100 %, con diferencias significativas entre las concentraciones. La mayor inhibición se registró con silicio a 10 000 ppm (100 %), seguido de fosfito de calcio a 2 000 ppm (99.4 %) y fosfito de potasio a 20 000 ppm (99 %). En ensayos in planta, a los 14 días después de inoculación, el control presentó una incidencia del 100 % y una severidad del 98 %. En contraste, el tratamiento con fosfito de potasio (KPhi1) a 2 000 ppm redujo la severidad al 56 %, lo que representa una eficacia del 42 % en comparación con el control.

Conclusión. Los fosfitos y el silicio mostraron un efecto inhibitorio sobre el crecimiento micelial del hongo bajo condiciones in vitro. En ensayos in planta, el fosfito de potasio, a 2 000 ppm fue el tratamiento más eficaz, reduciendo severidad de la marchitez vascular causada por Fol59.

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Cuadro 1. Sustancias bioactivas evaluadas en ensayos <em>in vitro</em> e <em>in planta</em> en tomate (<em>Solanum lycopersicum</em>).
Cuadro 1. Sustancias bioactivas evaluadas en ensayos in vitro e in planta en tomate (Solanum lycopersicum).
Cuadro 2. Concentraciones de sustancias bioactivas evaluadas frente a <em>Fusarium oxysporum</em> f. sp. <em>lycopersici</em> (<em>Fol59</em>) bajo condiciones <em>in vitro</em>.
Cuadro 2. Concentraciones de sustancias bioactivas evaluadas frente a Fusarium oxysporum f. sp. lycopersici (Fol59) bajo condiciones in vitro.
Cuadro 3. Concentraciones de sustancias bioactivas evaluadas en plantas de tomate bajo condiciones sin inoculación e inoculadas con <em>Fusarium oxysporum</em> f. sp. <em>lycopersici</em>.
Cuadro 3. Concentraciones de sustancias bioactivas evaluadas en plantas de tomate bajo condiciones sin inoculación e inoculadas con Fusarium oxysporum f. sp. lycopersici.
Cuadro 4. Porcentaje de inhibición de crecimiento radial (PICR) de <em>Fol59</em> usando fosfitos y silicio (KPhi1, KPhi2, CaPhi y Si) a diferentes concentraciones bajo condiciones <em>in vitro</em>.
Cuadro 4. Porcentaje de inhibición de crecimiento radial (PICR) de Fol59 usando fosfitos y silicio (KPhi1, KPhi2, CaPhi y Si) a diferentes concentraciones bajo condiciones in vitro.
Cuadro 5. Porcentaje de incidencia y severidad causada por <em>Fusarium oxysporum</em> f. sp. <em>lycopersici</em> (<em>Fol59</em>) en plantas de tomate a los 14 días después de inoculación (ddi).
Cuadro 5. Porcentaje de incidencia y severidad causada por Fusarium oxysporum f. sp. lycopersici (Fol59) en plantas de tomate a los 14 días después de inoculación (ddi).
Figura 1. Efecto de diferentes concentraciones de fosfitos y silicio sobre el crecimiento micelial de <em>Fol59</em>, a los siete días de incubación.
Figura 1. Efecto de diferentes concentraciones de fosfitos y silicio sobre el crecimiento micelial de Fol59, a los siete días de incubación.
Figura 2. Área bajo la curva del progreso de la enfermedad (ABCPE) a los 14 días después de la inoculación, expresada como severidad en plantas de tomate previamente tratadas con sustancias bioactivas (KPhi, CaPhi y Si) e inoculadas con el aislamiento <em>Fol59</em>. Barras con la misma letra no presentan diferencias significativas según la prueba de Tukey (p ≤ 0.05).
Figura 2. Área bajo la curva del progreso de la enfermedad (ABCPE) a los 14 días después de la inoculación, expresada como severidad en plantas de tomate previamente tratadas con sustancias bioactivas (KPhi, CaPhi y Si) e inoculadas con el aislamiento Fol59. Barras con la misma letra no presentan diferencias significativas según la prueba de Tukey (p ≤ 0.05).
Figura 3. Síntomas de marchitez vascular en plantas de tomate a los 14 días después de la inoculación (ddi). A) Plantas no inoculadas, incluyendo el control y tratamientos con sustancias bioactivas; B) Plantas inoculadas con <em>Fol59</em>, incluyendo el control inoculado y tratamientos con sustancias bioactivas.
Figura 3. Síntomas de marchitez vascular en plantas de tomate a los 14 días después de la inoculación (ddi). A) Plantas no inoculadas, incluyendo el control y tratamientos con sustancias bioactivas; B) Plantas inoculadas con Fol59, incluyendo el control inoculado y tratamientos con sustancias bioactivas.
  • Vol. 2026, 44(2)
  • Nota Fitopatológica

Potencial antagonista de rizobacterias nativas de Parkinsonia aculeata sobre Fusarium spp. asociado a maíces criollos del Bajío, México

PorLeandris Argentel Martínez, Ofelda Peñuelas Rubio*, Francisco Cervantes Ortíz, Joe Luis Arias Moscoso, Francisco Cadena Cadena, Pamela Romo Rodríguez, Lorenzo Pérez López, Rosario Alicia Fierro Coronado

Recibido: 15/enero/2026 – Publicado: 29/abril/2026
DOI: https://doi.org/10.18781/R.MEX.FIT.2601-2

Resumen Antecedentes/Objetivo. El género Fusarium comprende algunos de los hongos fitopatógenos más importantes que afectan al cultivo de maíz, ya que ocasionan enfermedades como la pudrición de la raíz, tallo y mazorca, que afectan la productividad agrícola de este cultivo. En la búsqueda de alternativas agrobiotecnológicas para el control de este hongo, se desarrolló el presente estudio para evaluar el potencial antagonista de rizobacterias de Parkinsonia aculeata contra cepas de Fusarium spp. asociadas a maíces criollos del Bajío, México.

Desarrollo experimental. Se emplearon dos cepas de Fusarium spp. (MC-03 y MC-05), aisladas de raíces de maíces nativos del Bajío, México con síntomas de Fusariosis. Estos hongos se confrontaron in vitro con nueve rizobacterias de P. aculeata: Enterobacter cloacae (BA1), Priestia megaterium (BA4 y BA-7B), Sinomonas halotolerans (BA10-B), BP5 (Staphylococcus warneri), BP6 (P. endophytica), Bacillus subtilis (TP1 y TP2) y S. hominis (TM6). Se realizó una caracterización micro-macroscópica de las cepas fúngicas y bioquímica para las rizobacterias. Se determinó la inhibición del crecimiento radial de los aislados fúngicos mediante confrontaciones duales hongo-rizobacterias por triplicado. Se empleó un diseño completamente aleatorizado, analizando los datos obtenidos en el software STATISTICA mediante una ANOVA basada en un modelo lineal de efectos fijos y una prueba comparación de medias por DMS (p>0.05).

Resultados. A excepción de P. endophytica (BP6), todas las rizobacterias presentaron actividad enzimática relacionada con mecanismos de antagonismo fúngico. B. subtilis (TP1) produjo gluacanasas, lipasas y proteasas. La caracterización micro y macroscópica de las cepas fúngicas indicó que pertenecen a Fusarium spp. En la confrontación rizobacterias- MC-03, las cepas bacterianas de B. subtilis (TP1 y TP2) fueron estadísticamente iguales y lograron la mayor inhibición del crecimiento micelial (23 %). Con la cepa fúngica MC-05, P. endophytica (BP6) y S. hominis (TM6) fueron estadísticamente superiores al resto de las rizobacterias al momento inhibir el crecimiento micelial en 17 %, seguidas por las dos cepas de B. subtilis (TP1 y TP2) que inhibieron el 10 y 17 % respectivamente.

Conclusión. Existió variabilidad significativa en la respuesta del crecimiento micelial de los hongos ante las rizobacterias. B. subtilis (TP1 y TP2), S. hominis (TM6) y P. endophytica (BP6), presentaron un efecto antagónico, ya que inhibieron el crecimiento micelial de las cepas de Fusarium spp. hasta en 23 % respecto al control absoluto y comercial. El presente estudio establece las bases científicas preliminares para la obtención de un biofungicida con capacidades específicas de inhibición de los hongos estudiados.

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Cuadro 1. Caracterización bioquímica de las rizobacterias aisladas de palo verde (<em>Parkinsonia aculeata</em>).
Cuadro 1. Caracterización bioquímica de las rizobacterias aisladas de palo verde (Parkinsonia aculeata).
Figura 1. Diagrama del ensayo de confrontación dual hongo-rizobacteria. a) Distribución de los microorganismos en la placa Petri; b-c) Características macroscópicas de las nueve bacterias [<em>E. cloacae</em> (BA1), <em>P. megaterium</em> (BA4 y BA7B), <em>S. halotolerans</em> (BA10B), <em>S. warneri</em> (BP5), <em>P. endophytica</em> (BP6), <em>S. hominis</em> (TM6), <em>B. subtilis</em> (TP1 y TP2)] y dos hongos (MC-03 y MC-05), respectivamente.
Figura 1. Diagrama del ensayo de confrontación dual hongo-rizobacteria. a) Distribución de los microorganismos en la placa Petri; b-c) Características macroscópicas de las nueve bacterias [E. cloacae (BA1), P. megaterium (BA4 y BA7B), S. halotolerans (BA10B), S. warneri (BP5), P. endophytica (BP6), S. hominis (TM6), B. subtilis (TP1 y TP2)] y dos hongos (MC-03 y MC-05), respectivamente.
Figura 2. Caracterización morfológica de cepas fúngicas e <em>Fusarium</em>. A) Características macroscópicas de las cepas fúngicas: vistas de anverso (superior) y reverso (inferior) de placas Petri con medio PDA de 10 días después de la siembra; B y C) Estructuras miceliales y conidiales observadas mediante microscopía óptica a 40 y 100X (con aceite de inmersión), a partir de microcultivos de 5 días después de la siembra y teñidos con azul de lactofenol (Riddell, 1950).
Figura 2. Caracterización morfológica de cepas fúngicas e Fusarium. A) Características macroscópicas de las cepas fúngicas: vistas de anverso (superior) y reverso (inferior) de placas Petri con medio PDA de 10 días después de la siembra; B y C) Estructuras miceliales y conidiales observadas mediante microscopía óptica a 40 y 100X (con aceite de inmersión), a partir de microcultivos de 5 días después de la siembra y teñidos con azul de lactofenol (Riddell, 1950).
Figura 3. Crecimiento micelial presentado por las cepas de <em>Fusarium</em> spp. MC-03 (a) y MC-05 (b) durante las confrontaciones duales con bacterias antagonistas. En el eje de las Y se presentan los tratamientos: CA: control absoluto; CC: control comercial; bacterias antagonistas: BA1 (<em>E. cloacae</em>), BA4 y BA7B (<em>P. megaterium</em>), BA10B (<em>Sinomonas halotolerans</em>), BP5 (<em>S. warneri</em>), BP6 (<em>P. endophytica</em>), TM6 (<em>S. hominis</em>), TP1 y TP2 (<em>B. subtilis</em>).
Figura 3. Crecimiento micelial presentado por las cepas de Fusarium spp. MC-03 (a) y MC-05 (b) durante las confrontaciones duales con bacterias antagonistas. En el eje de las Y se presentan los tratamientos: CA: control absoluto; CC: control comercial; bacterias antagonistas: BA1 (E. cloacae), BA4 y BA7B (P. megaterium), BA10B (Sinomonas halotolerans), BP5 (S. warneri), BP6 (P. endophytica), TM6 (S. hominis), TP1 y TP2 (B. subtilis).
  • Vol. 2026, 44(2)
  • Nota Fitopatológica

Detección de un potencial alphanucleorhabdovirus infectando Carica papaya en Costa Rica

PorLaura Garita Salazar, William Villalobos Muller, Mauricio Montero Astúa, Antonio Bogantes Arias, Teresita Coto Morales, Izayana Sandoval Carvajal, Lisela Moreira Carmona*

Recibido: 11/febrero/2026 – Publicado: 29/abril/2026
DOI: https://doi.org/10.18781/R.MEX.FIT.2602-3

Resumen Antecedentes/Objetivo. Clorosis foliar, entrenudos cortos, y pecíolos curveados con estrías color púrpura se observan en plantaciones de papaya (Carica papaya) en las regiones Norte y Atlántica en Costa Rica desde el 2014. La identificación de un presunto virus de plantas asociado con estos síntomas fue el objetivo de esta investigación.

Desarrollo experimental. El tejido vegetal fue evaluado mediante ELISA (cuatro virus de plantas y el género potyvirus), microscopia electrónica de transmisión (MET), RT-PCR (con iniciadores universales para virus de plantas), secuenciación y análisis filogenéticos.

Resultados. Todas las pruebas de ELISA resultaron negativas. Mediante MET, se observaron sólo en las plantas sintomáticas, partículas virales con forma de bala, éstas dentro de membranas en los núcleos y el citoplasma. Amplicones de 900 pb se obtuvieron consistentemente en las muestras sintomáticas usando iniciadores degenerados para rhabdovirus de plantas. Las secuencias nucleotídicas mostraron similitudes entre 95.6 y 96.8 % con un alphanucleorhabdovirus (Alphanucleorhabdovirus, Rhabdoviridae) tentativo que infecta papaya.

Conclusión. Este es el primer reporte de un alphanucleorhabdovirus tentativo asociado con plantas sintomáticas de papaya mostrando la enfermedad del "pecíolo rayado", como se le conoce localmente en Costa Rica, pero los postulados de Koch deben ser cumplidos y el vector identificado.

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Cuadro 1. Iniciadores y perfiles del termociclado empleados para detectar virus ARN en las plantas de <em>Carica papaya</em> analizadas en este estudio.
Cuadro 1. Iniciadores y perfiles del termociclado empleados para detectar virus ARN en las plantas de Carica papaya analizadas en este estudio.
Cuadro 2. Resumen de las pruebas realizadas y resultados obtenidos de las muestras foliares de plantas de <em>Carica papaya</em>, sintomáticas y asintomáticas, recolectadas en Costa Rica para determinar si algún virus está asociado a la enfermedad del
Cuadro 2. Resumen de las pruebas realizadas y resultados obtenidos de las muestras foliares de plantas de Carica papaya, sintomáticas y asintomáticas, recolectadas en Costa Rica para determinar si algún virus está asociado a la enfermedad del "pecíolo rayado".
Figura 1. Alteraciones morfológicas observadas en plantas de <em>Carica papaya</em> con la enfermedad de "pecíolo rayado" en Costa Rica. <strong>A</strong>) Una planta sintomática (flecha) con los pecíolos curvos hacia abajo, reducción del número de hojas en el meristemo apical, y cese del cuajado de frutos. Adyacente (levemente atrás a la derecha) dos plantas sanas mostrando abundante desarrollo de frutos y la típica arquitectura foliar; <strong>B</strong>) Vista detallada de la sección apical de una planta sintomática que muestra reducción foliar en el meristemo, curvatura de pecíolos, y escaso cuajado de frutos, al fondo (izquierda) una planta sana con producción normal de frutos; <strong>C</strong>) Vista detallada de la sección superior de una planta sana; <strong>D</strong>) Pecíolos de una planta enferma con estrías de color púrpura; <strong>E</strong>) Comparación entre pecíolos de plantas sintomáticas (arriba) y sanas (abajo).
Figura 1. Alteraciones morfológicas observadas en plantas de Carica papaya con la enfermedad de "pecíolo rayado" en Costa Rica. A) Una planta sintomática (flecha) con los pecíolos curvos hacia abajo, reducción del número de hojas en el meristemo apical, y cese del cuajado de frutos. Adyacente (levemente atrás a la derecha) dos plantas sanas mostrando abundante desarrollo de frutos y la típica arquitectura foliar; B) Vista detallada de la sección apical de una planta sintomática que muestra reducción foliar en el meristemo, curvatura de pecíolos, y escaso cuajado de frutos, al fondo (izquierda) una planta sana con producción normal de frutos; C) Vista detallada de la sección superior de una planta sana; D) Pecíolos de una planta enferma con estrías de color púrpura; E) Comparación entre pecíolos de plantas sintomáticas (arriba) y sanas (abajo).
Figura 2. Núcleo de una célula de parénquima de una planta sintomática de <em>Carica papaya</em> con la enfermedad de "pecíolo rayado" observada con el microscopio electrónico de transmisión. <strong>A</strong>) Partículas con forma de bala dentro de vesículas membranosas en el núcleo celular; <strong>B</strong>) Detalle de las partículas vistas en el espacio perinuclear;<strong> C</strong>). Detalle de las partículas virales dentro de las vesículas membranosas dispersas en el núcleo. C= citoplasma, M= mitocondria, N= núcleo, Nu= nucleolo, inm= membrana nuclear interna, mv= vesículas membranosas llenas de partículas virales, onm= membrana nuclear externa, vp= partículas virales.
Figura 2. Núcleo de una célula de parénquima de una planta sintomática de Carica papaya con la enfermedad de "pecíolo rayado" observada con el microscopio electrónico de transmisión. A) Partículas con forma de bala dentro de vesículas membranosas en el núcleo celular; B) Detalle de las partículas vistas en el espacio perinuclear; C). Detalle de las partículas virales dentro de las vesículas membranosas dispersas en el núcleo. C= citoplasma, M= mitocondria, N= núcleo, Nu= nucleolo, inm= membrana nuclear interna, mv= vesículas membranosas llenas de partículas virales, onm= membrana nuclear externa, vp= partículas virales.
Figura 3. Árbol filogenético construido con las secuencias parciales (900 nt) de la ARN polimerasa dependiente del ARN viral (gen L) de un alphanucleorhabdovirus tentativo obtenido de <em>Carica papaya</em> en Costa Rica (GB Acc. No. PX637683 a PX637686) junto con 31 diferentes rhabdovirus de diferentes plantas (34 secuencias) y el virus Farmington (GB Acc. No. KC602379) como grupo externo, todas ellas recuperadas del GenBank. Éstas se alinearon con el algoritmo ClustalW utilizando BioEdit v.7.7.1, y la filogenia se infirió mediante el método de Máxima Verosimilitud en Mega 12 (modelo "General de Tiempo Reversible" (GTR) con una distribución gamma de tasas de sustitución con sitios invariantes) y un "Bootstrap" de 1000 réplicas.
Figura 3. Árbol filogenético construido con las secuencias parciales (900 nt) de la ARN polimerasa dependiente del ARN viral (gen L) de un alphanucleorhabdovirus tentativo obtenido de Carica papaya en Costa Rica (GB Acc. No. PX637683 a PX637686) junto con 31 diferentes rhabdovirus de diferentes plantas (34 secuencias) y el virus Farmington (GB Acc. No. KC602379) como grupo externo, todas ellas recuperadas del GenBank. Éstas se alinearon con el algoritmo ClustalW utilizando BioEdit v.7.7.1, y la filogenia se infirió mediante el método de Máxima Verosimilitud en Mega 12 (modelo "General de Tiempo Reversible" (GTR) con una distribución gamma de tasas de sustitución con sitios invariantes) y un "Bootstrap" de 1000 réplicas.
  • Vol. 2026, 44(2)
  • Nota Fitopatológica

Potencial de Tortistilus wickhami en transmisión de grapevine red blotch virus (Grablovirus vitis, Geminiviridae) en Baja California, México

PorCynthia Ford Villalón, David Schneider, Idalia Montesinos Solano, Jimena Carrillo Tripp*

Recibido: 13/diciembre/2025 – Publicado: 23/abril/2026
DOI: https://doi.org/10.18781/R.MEX.FIT.2512-4

Resumen Antecedentes/Objetivo. El virus de la mancha roja de la vid, GRBV (Grablovirus vitis) afecta el cultivo de vid (Vitis vinifera) causando pérdidas económicas significativas. En México, donde el GRBV se ha reportado en regiones vitivinícolas como Baja California, la información sobre los posibles vectores de GRBV es limitada. Aunque el periquito tricornudo de la alfalfa (Spissistilus festinus) es un vector confirmado en los Estados Unidos de América, el papel de otros membrácidos en viñedos a nivel global aún no está claro. Recientemente, el membrácido neártico (Tortistilus wickhami) ha sido reportado en Baja California, lo que motivó este estudio para evaluar su potencial para adquirir y transmitir el GRBV.

Desarrollo experimental. Entre febrero y noviembre de 2023, se recolectaron adultos del membrácido neártico en 20 viñedos del Valle de Guadalupe, Baja California. Un total de 30 individuos fue analizado por PCR en tiempo real para detectar GRBV. En mayo, 2024, se recolectaron 17 individuos adicionales que fueron utilizados en ensayos de transmisión, con un periodo de acceso a la adquisición de hasta cuatro días en hojas de vid (cv. Cabernet Sauvignon) infectadas con GRBV, seguido de un periodo de acceso a la inoculación de hasta 9 días en hojas libres de virus. Los insectos y las hojas receptoras fueron analizados por PCR en tiempo real para detectar GRBV.

Resultados. El virus GRBV fue detectado en 6.7 % (2/30) de los individuos colectados en 2023, los cuales provenían exclusivamente de viñedos previamente confirmados como positivos a GRBV. En los ensayos de transmisión, el 53 % (9/17) de los insectos adquirieron partículas virales tras alimentarse de hojas infectadas; sin embargo, no hubo infección detectable en ninguna de las hojas receptoras.

Conclusión. Este estudio demuestra que el membrácido neártico, un insecto filogenéticamente cercano y morfológicamente similar al periquito tricornudo de la alfalfa (vector confirmado de GRBV), fue capaz de adquirir el virus tanto en condiciones de campo como en laboratorio; no obstante, bajo las condiciones experimentales de laboratorio probadas, no se demostró la transmisión a plantas receptoras.

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Cuadro 1. Identificación taxonómica de membrácidos colectados en el estudio de campo, y detección molecular de GRBV.
Cuadro 1. Identificación taxonómica de membrácidos colectados en el estudio de campo, y detección molecular de GRBV.
Cuadro 2. Resultados del ensayo de transmisión de GRBV (<em>Grablovirus vitis</em>) por adultos del membrácido neártico.
Cuadro 2. Resultados del ensayo de transmisión de GRBV (Grablovirus vitis) por adultos del membrácido neártico.
Figura 1. Representación esquemática del ensayo de transmisión de GRBV. Los insectos fueron inicialmente expuestos a hojas escindidas de una vid donadora infectada con GRBV y posteriormente transferidos a hojas escindidas receptoras de vides libres de GRBV para evaluar la posible transmisión del virus. Las hojas individuales se mantuvieron en agua. Las líneas discontinuas indican la remoción de los insectos muertos del interior de la jaula para la detección de GRBV al final del ensayo. La figura fue elaborada utilizando algunos elementos de BioRender.
Figura 1. Representación esquemática del ensayo de transmisión de GRBV. Los insectos fueron inicialmente expuestos a hojas escindidas de una vid donadora infectada con GRBV y posteriormente transferidos a hojas escindidas receptoras de vides libres de GRBV para evaluar la posible transmisión del virus. Las hojas individuales se mantuvieron en agua. Las líneas discontinuas indican la remoción de los insectos muertos del interior de la jaula para la detección de GRBV al final del ensayo. La figura fue elaborada utilizando algunos elementos de BioRender.
Figura 2. Ensayo de transmisión. A) Ejemplo de adultos del membrácido neártico recolectados manualmente en un viñedo, utilizados en el ensayo de transmisión. Crédito de la fotografía: Kyara Acosta Ramos. B) Vista interna de una jaula durante la fase de adquisición de partículas virales. El diseño de la jaula facilitó la interacción insecto–hoja. Una porción de los pecíolos se mantuvo sumergida en agua estéril dentro de viales de 2 mL sellados con parafilm, lo que permitió mantener la hoja en posición vertical. C) Marca en forma de anillo en el pecíolo de una hoja receptora, causada por daño mecánico tras la alimentación de un membrácido neártico.
Figura 2. Ensayo de transmisión. A) Ejemplo de adultos del membrácido neártico recolectados manualmente en un viñedo, utilizados en el ensayo de transmisión. Crédito de la fotografía: Kyara Acosta Ramos. B) Vista interna de una jaula durante la fase de adquisición de partículas virales. El diseño de la jaula facilitó la interacción insecto–hoja. Una porción de los pecíolos se mantuvo sumergida en agua estéril dentro de viales de 2 mL sellados con parafilm, lo que permitió mantener la hoja en posición vertical. C) Marca en forma de anillo en el pecíolo de una hoja receptora, causada por daño mecánico tras la alimentación de un membrácido neártico.
  • Vol. 2026, 44(2)
  • Nota Fitopatológica

Ácido peracético para el manejo de cenicilla (Erysiphe vaccinii) en arándano (Vaccinium corymbosum) en condición comercial de campo en Perú

PorSebastian Iglesias Osores*, Luis A Alvarez

Recibido: 08/diciembre/2025 – Publicado: 23/abril/2026
DOI: https://doi.org/10.18781/R.MEX.FIT.2512-2

Resumen Antecedentes/Objetivo. El oídio del arándano, asociado a Erysiphe vaccinii, es una enfermedad foliar que puede provocar defoliación y afectar el desempeño del cultivo. En Perú, la información sobre el uso foliar de ácido peracético para su manejo en campo es limitada. El objetivo del presente estudio fue evaluar el efecto de aplicaciones foliares de ácido peracético al 15 % sobre la incidencia de oídio en arándano bajo condiciones de campo en Ica, Perú.

Desarrollo experimental. El ensayo se realizó en un cultivo comercial de arándano cv. Biloxi en Ica, Perú, bajo un diseño de bloques completos al azar con cinco tratamientos: testigo sin aplicación y ácido peracético al 15 % a 2, 4, 6 y 8 mL L-1, con cuatro repeticiones. Los tratamientos se aplicaron por vía foliar en dos oportunidades separadas por siete días, con un volumen de 600 L ha-1. La variable de respuesta fue la incidencia de hojas con síntomas de oídio (con inoculación natural), evaluada en siete fechas desde la primera aplicación. También se registró visualmente la presencia de síntomas de fitotoxicidad.

Resultados. Antes de la primera aplicación no se detectaron diferencias entre tratamientos. Después de la primera aplicación, el ácido peracético redujo la incidencia de oídio respecto al testigo, con eficacias iniciales de hasta 67.7 %. Tras la segunda aplicación, las dosis de 4, 6 y 8 mL L-1 mostraron la mejor respuesta, con eficacias máximas de 69.3, 78.0 y 79.7 %, respectivamente. La dosis de 2 mL L-1 presentó un efecto menor. En ninguna de las dosis evaluadas se observaron síntomas visibles de fitotoxicidad.

Conclusión. En las condiciones de este ensayo, el ácido peracético al 15 % redujo la incidencia foliar de oídio en arándano, con mejor respuesta en las dosis de 4, 6 y 8 mL L-1 (69.3, 78.0 y 79.7 %). Estos resultados indican un efecto favorable del producto bajo condiciones de campo, aunque su validación requiere evaluaciones adicionales en más localidades o campañas.

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Cuadro 1. Incidencia foliar de oídio en arándano tratada con ácido peracético al 15 % en siete fechas de evaluación.
Cuadro 1. Incidencia foliar de oídio en arándano tratada con ácido peracético al 15 % en siete fechas de evaluación.
Cuadro 2. Eficacia de control del oídio en arándano tratada con ácido peracético al 15 %, estimada mediante la fórmula de Abbott.
Cuadro 2. Eficacia de control del oídio en arándano tratada con ácido peracético al 15 %, estimada mediante la fórmula de Abbott.
  • Vol. 2026, 44(2)
  • Reporte Fitopatológico

Nivel de fusariosis (Fusarium oxysporum) en plantas de jitomate (Solanum lycopersicum) tratadas con Trichoderma asperellum Jc01 y Bacillus subtilis ANT01

PorMiguel Salvador Figueroa, José Fernando Gómez López, Miguel Salvador Adriano, María de Lourdes Adriano Anaya, Isidro Ovando Medina, Benjamín Moreno Castillo*

Recibido: 26/agosto/2025 – Publicado: 11/marzo/2026
DOI: https://doi.org/10.18781/R.MEX.FIT.2408-4

Resumen Antecedentes/Objetivo. La producción y calidad del cultivo de jitomate (Solanum lycopersicum) se ven fuertemente reducidas por el hongo Fusarium oxysporum, agente causal de la fusariosis. Convencionalmente se aplican fungicidas químicos, aunque ante infecciones severas las cosechas se pierden en su totalidad. Las condiciones ambientales favorables incrementan los niveles de incidencia, capacidad de infección y de diseminación. El control biológico es una estrategia útil para combatir este tipo de patógenos. El objetivo de esta investigación consistió en determinar la incidencia de fusariosis (Fusarium oxysporum) en plantas de tomate cultivadas en campo y tratadas con Trichoderma asperellum Jc01 y Bacillus subtilis ANT01.

Desarrollo experimental. Trichoderma asperellum Jc01 y Bacillus subtilis ANT01 de manera individual y en combinación, fueron aplicados semanalmente a la zona de goteo de plantas de tomate (Solanum lycopersicum). Periódicamente se muestreó la incidencia de la enfermedad tanto en las plantas tratadas y no tratadas para monitorear la evolución de la incidencia de la enfermedad durante 15 semanas. Adicionalmente se registró el número de flores y frutos producidos en las plantas experimentales.

Resultados. Al final del ensayo de campo, las plantas tratadas con B. subtilis ANT01 mostraron 60 % menos incidencia con respecto al testigo y un total de 47.9 frutos producidos planta-1, mientras que las plantas tratadas con Trichoderma asperellum Jc01 o la combinación de ambos microorganismos mostraron 16 y 28 % menos incidencia que el testigo, y 18.0 y 27.3 frutos producidos planta-1, respectivamente.

Conclusión. Los resultados muestran evidencia parcial del potencial de la cepa ANT01 como agente de biocontrol de F. oxysporum en plantas de tomate.

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Cuadro 1. Efecto de <em>Bacillus subtilis</em> ANT01 y <em>Trichoderma asperellum</em> Jc01 sobre la incidencia de la fusariosis, producción de flores y frutos en el cultivo de tomate.
Cuadro 1. Efecto de Bacillus subtilis ANT01 y Trichoderma asperellum Jc01 sobre la incidencia de la fusariosis, producción de flores y frutos en el cultivo de tomate.
Figura 1. Incidencia (representada de 0-1) de síntomas asociados a fusariosis en plantas de tomate cultivadas en campo y sometidas a diferentes tratamientos de control biológico.
Figura 1. Incidencia (representada de 0-1) de síntomas asociados a fusariosis en plantas de tomate cultivadas en campo y sometidas a diferentes tratamientos de control biológico.
  • Vol. 2026, 44(2)
  • Nota Fitopatológica

Influencia de la humedad del suelo en incidencia y severidad de la mancha foliar (Alternaria alternata) en genotipos de Glycine max

PorGuillermo Ascencio Luciano, Nicolás Maldonado Moreno, Reinaldo Méndez Aguilar, Moisés Felipe Victoriano*

Recibido: 21/agosto/2024 – Publicado: 06/marzo/2026
DOI: https://doi.org/10.18781/R.MEX.FIT.2408-00

Resumen Antecedentes/Objetivo. El cultivo de soya es afectado por diversas enfermedades ocasionadas por hongos, éstos pueden reducir los rendimientos hasta en un 100 %. El objetivo de este trabajo fue identificar el hongo asociado a la mancha foliar en soya, y evaluar la influencia de la humedad del suelo en la incidencia y severidad de la enfermedad en planta y hoja en 30 genotipos de soya.

Materiales y Métodos. Se colectaron tres hojas de soya con síntomas de mancha foliar por genotipo, para su identificación morfológica del hongo mediante claves taxonómicas. Se evaluaron dos condiciones de humedad (riego y temporal). La incidencia en planta se estimó a partir de 10 plantas al azar, en el mismo periodo se evaluó la incidencia y severidad foliar; para incidencia foliar se contaron hojas sanas y hojas enfermas de 10 plantas por genotipo. Posteriormente, a 10 plantas por genotipo se les seleccionó una hoja en la quinta posición de arriba abajo, las hojas se fotografiaron, y se calculó el área dañada y área total de la hoja con el programa ImageJ, con lo que se determinó severidad en hoja.

Resultados. Se identificó a Alternaria alternata asociado a la mancha foliar. En el ambiente de temporal la incidencia en hoja por A. alternata osciló entre 4.4 al 50.55 %, para la severidad los valores oscilaron entre 0.3 y 17.4 %. En el ambiente de riego la incidencia varió entre 7 a 50.9 %, la severidad osciló entre 0 y 24.7 %.

Conclusión. Se asoció A. alternata a la mancha foliar en soya, la cual es poco estudiada en México, y actualmente se desconocen sus efectos en este cultivo, por ello resulta de interés científico seguir trabajando en proyectos de investigación con esta especie.

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Cuadro 1. Incidencia y severidad en hoja de la mancha foliar causada por <em>Alternaria alternata</em>, en genotipos de soya en condiciones de temporal y riego, en Altamira, Tamaulipas, 2022.
Cuadro 1. Incidencia y severidad en hoja de la mancha foliar causada por Alternaria alternata, en genotipos de soya en condiciones de temporal y riego, en Altamira, Tamaulipas, 2022.
Figura 1. <em>Alternaria alternata</em> en soya, A) Hojas con síntomas, B) Signos observados al microscopio estereoscopio a 4X, C) Conidios de A<em>. alternata</em> observadas al microscopio óptico a 40X.
Figura 1. Alternaria alternata en soya, A) Hojas con síntomas, B) Signos observados al microscopio estereoscopio a 4X, C) Conidios de A. alternata observadas al microscopio óptico a 40X.
Figura 2. Incidencia de la mancha foliar por planta causado por <em>Alternaria alternata</em>, en genotipos de soya en condiciones de riego y temporal en Altamira, Tamaulipas, 2022. HUAS = Huasteca.
Figura 2. Incidencia de la mancha foliar por planta causado por Alternaria alternata, en genotipos de soya en condiciones de riego y temporal en Altamira, Tamaulipas, 2022. HUAS = Huasteca.
Figura 3. Síntomas de mancha foliar en soya inducidos por <em>Alternaria alternata</em>, hojas ubicada en quinta posición de arriba-abajo en genotipos de soya en condiciones de riego, (genotipos con menores daños) H10-3057 (1-2), H02-1706 (3-4), H85-1937 (5-6), H06-1014 (7-8); (genotipos con mayores daños) H80-0994 (9-10), H17-0331 (11-12), H02-2091 (13-14), H98-1068 (15-16); condiciones de temporal, (genotipos con menores daños) H02-1706 (17-18), HUAS-700 (19-20), H98-1076 (21-22), H85-1937 (23-24); (genotipos con mayores daños)), H02-2331 (25-26), H02-2295 (27-28), H06-1014 (29-30), H17-0707 (31-32).
Figura 3. Síntomas de mancha foliar en soya inducidos por Alternaria alternata, hojas ubicada en quinta posición de arriba-abajo en genotipos de soya en condiciones de riego, (genotipos con menores daños) H10-3057 (1-2), H02-1706 (3-4), H85-1937 (5-6), H06-1014 (7-8); (genotipos con mayores daños) H80-0994 (9-10), H17-0331 (11-12), H02-2091 (13-14), H98-1068 (15-16); condiciones de temporal, (genotipos con menores daños) H02-1706 (17-18), HUAS-700 (19-20), H98-1076 (21-22), H85-1937 (23-24); (genotipos con mayores daños)), H02-2331 (25-26), H02-2295 (27-28), H06-1014 (29-30), H17-0707 (31-32).
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