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Enfermedad emergente en el cultivo de melón asociada a una infección mixta por tres virus transmitidos por mosca blanca en La Comarca Lagunera, México. Figura 2 - Descripción genómica completa de begomovirus y crinivirus aislados de la planta de melón, provenientes de la Comarca Lagunera. A) Genoma completo de CuLCrV-CL (ADN-A de 2631 pb y ADN-B de 2602 pb); B) Genoma completo de WmCSV-CL (ADN-A de 2758 pb y ADN-B de 2766 pb). Se especifican los marcos de lectura abierta de los segmentos ADN-A (CP, AC4, Rep, TrAP y REn) y ADN-B (NSP y MP), así como las regiones intergénicas (IR) de todos los segmentos virales. En el caso de WmCSV, el segmento ADN-A también codifica los genes AV2 y AC5. C) Organización genómica del segmento de RNA 2 de CYSDV (7976 pb) (número de acceso: NC_004810). Se exhiben los marcos de lectura abierta de Hsp70h, P6, P59, P9, CP, CPm y p26. La región correspondiente al gen CP (753 pb), utilizada para la detección molecular de CYSDV, está indicada con flechas rojas. Creado con BioRender.com

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  • Vol. 2026, 44(3)
  • Artículo Científico

Enfermedad emergente en el cultivo de melón asociada a una infección mixta por tres virus transmitidos por mosca blanca en La Comarca Lagunera, México

PorÁngela Paulina Arce Leal, Edgar Antonio Rodríguez Negrete, Manuel Arturo Méndez De León, Enrique Alejandro Guevara Rivera, Norma Elena Leyva López, Jesús Méndez Lozano*

Recibido: 14/abril/2026 – Publicado: 05/agosto/2026
DOI: https://doi.org/10.18781/R.MEX.FIT.2604-3

Resumen Antecedentes/Objetivo. Las cucurbitáceas representan un pilar económico en la agricultura global y nacional. No obstante, su productividad se encuentra amenazada por la incidencia creciente de fitopatologías virales. En este contexto, las coinfecciones por miembros de los géneros Begomovirus y Crinivirus se han asociado con una exacerbación de la sintomatología y con elevadas tasas de incidencia en los cultivos, originando cuadros de enfermedad emergente. Por lo anterior, el objetivo del presente estudio se centró en identificar y caracterizar molecularmente los begomovirus y crinivirus asociados a una enfermedad emergente en cultivos de melón en un municipio de La Comarca Lagunera, México.

Materiales y Métodos. Se realizó un muestreo dirigido de nueve plantas de melón que manifestaban síntomas como clorosis intervenal severa, moteado, mosaicos amarillos y deformación de frutos. Para la detección viral, se llevó a cabo una extracción de ADN con CTAB al 3 % y de ARN con el reactivo TRIzol. La detección de begomovirus y crinivirus se realizó mediante PCR y RT-PCR con cebadores específicos. Los genomas completos de los begomovirus se enriquecieron mediante la amplificación de círculo rodante (RCA). Para crinivirus se generaron amplicones del ORF de la proteína de la cápside (CP) mediante RT-PCR. Posteriormente, los genomas y los amplicones de la CP se clonaron y secuenciaron para realizar análisis filogenéticos y evolutivos.

Resultados. La identificación molecular reveló prevalencia de infecciones mixtas en siete de nueve muestras, compuestas por dos especies de begomovirus, cucurbit leaf crumple virus (CuLCrV, Begomovirus cucurbitae) y watermelon chlorotic stunt virus (WmCSV, Begomovirus citrulli), y el crinivirus cucurbit yellow stunting disorder virus (CYSDV, Crinivirus cucurbitae). Los análisis genómicos confirmaron que CuLCrV y WmCSV poseen arquitecturas genómicas típicas de begomovirus. Se observó una divergencia significativa en loci específicos (gen C4 de CuLCrV, gen NSP de WmCSV, así como en las regiones intergénicas del ADN-B de ambas especies), lo que sugiere que podrían estar involucrados en procesos de adaptación evolutiva. Filogenéticamente, aunque el aislado de CuLCrV mostró cercanía con aislados de Arizona y Sonora, este se ubicó en un clado distinto de los previamente reportados en la región, lo que indica una trayectoria evolutiva independiente. Por otro lado, el análisis filogenético a partir de la secuencia nucleotídica del gen de la proteína de cápside (CP) de CYSDV reveló una estrecha relación con aislados previamente reportados en Jordania y en México.

Conclusión. Este estudio constituye el primer reporte en México sobre una enfermedad asociada a la coinfección de WmCSV, CuLCrV y CYSDV en cucurbitáceas. Los hallazgos subrayan la complejidad de las enfermedades emergentes y resaltan la importancia de fortalecer la vigilancia epidemiológica molecular para mitigar el impacto de estas infecciones mixtas en la agricultura nacional.

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Cuadro 1. Detección molecular de begomovirus y crinivirus en tejido foliar de melón. Se analizaron nueve muestras mediante PCR para la detección de begomovirus; cucurbit leaf crumple virus (CuLCrV,), watermelon chlorotic stunt virus (WmCSV), squash leaf curl virus (SLCuV) y melon chlorotic leaf curl virus (MCLCuV), y RT-PCR para los crinivirus: cucurbit yellow stunting disorder virus (CYSDV), cucurbit chlorotic yellows virus (CCYV), beet pseudo yellows virus (BPYV) y lettuce infectious virus (LIVY). (+) detección positiva, (-) detección negativa.
Cuadro 1. Detección molecular de begomovirus y crinivirus en tejido foliar de melón. Se analizaron nueve muestras mediante PCR para la detección de begomovirus; cucurbit leaf crumple virus (CuLCrV,), watermelon chlorotic stunt virus (WmCSV), squash leaf curl virus (SLCuV) y melon chlorotic leaf curl virus (MCLCuV), y RT-PCR para los crinivirus: cucurbit yellow stunting disorder virus (CYSDV), cucurbit chlorotic yellows virus (CCYV), beet pseudo yellows virus (BPYV) y lettuce infectious virus (LIVY). (+) detección positiva, (-) detección negativa.
Figura 1. Plantas y frutos de melón con síntomas de virosis colectados en la región de La Comarca Lagunera (CL). Se colectó un total de nueve muestras (M1-M9) de melón con síntomas de virosis en el municipio de Tlahualilo. Los síntomas observados en el tejido foliar fueron clorosis intervenal severa, moteado y mosaico amarillo, mientras que en los frutos se observaron clorosis, deformación y agrietamiento.
Figura 1. Plantas y frutos de melón con síntomas de virosis colectados en la región de La Comarca Lagunera (CL). Se colectó un total de nueve muestras (M1-M9) de melón con síntomas de virosis en el municipio de Tlahualilo. Los síntomas observados en el tejido foliar fueron clorosis intervenal severa, moteado y mosaico amarillo, mientras que en los frutos se observaron clorosis, deformación y agrietamiento.
Figura 2. Descripción genómica completa de begomovirus y crinivirus aislados de la planta de melón, provenientes de la Comarca Lagunera. A) Genoma completo de CuLCrV-CL (ADN-A de 2631 pb y ADN-B de 2602 pb); B) Genoma completo de WmCSV-CL (ADN-A de 2758 pb y ADN-B de 2766 pb). Se especifican los marcos de lectura abierta de los segmentos ADN-A (CP, AC4, Rep, TrAP y REn) y ADN-B (NSP y MP), así como las regiones intergénicas (IR) de todos los segmentos virales. En el caso de WmCSV, el segmento ADN-A también codifica los genes AV2 y AC5. C) Organización genómica del segmento de RNA 2 de CYSDV (7976 pb) (número de acceso: NC_004810). Se exhiben los marcos de lectura abierta de Hsp70h, P6, P59, P9, CP, CPm y p26. La región correspondiente al gen CP (753 pb), utilizada para la detección molecular de CYSDV, está indicada con flechas rojas. Creado con BioRender.com
Figura 2. Descripción genómica completa de begomovirus y crinivirus aislados de la planta de melón, provenientes de la Comarca Lagunera. A) Genoma completo de CuLCrV-CL (ADN-A de 2631 pb y ADN-B de 2602 pb); B) Genoma completo de WmCSV-CL (ADN-A de 2758 pb y ADN-B de 2766 pb). Se especifican los marcos de lectura abierta de los segmentos ADN-A (CP, AC4, Rep, TrAP y REn) y ADN-B (NSP y MP), así como las regiones intergénicas (IR) de todos los segmentos virales. En el caso de WmCSV, el segmento ADN-A también codifica los genes AV2 y AC5. C) Organización genómica del segmento de RNA 2 de CYSDV (7976 pb) (número de acceso: NC_004810). Se exhiben los marcos de lectura abierta de Hsp70h, P6, P59, P9, CP, CPm y p26. La región correspondiente al gen CP (753 pb), utilizada para la detección molecular de CYSDV, está indicada con flechas rojas. Creado con BioRender.com
Figura 3. Árboles filogenéticos correspondientes de los segmentos de ADN-A de begomovirus y al gen CP de crinivirus. Las filogenias Neighbor-Joining (NJ) se construyeron mediante alineamientos múltiples de los segmentos de ADN-A de los begomovirus CuLCrV-CL y WmCSV-CL (paneles A y B, respectivamente), así como mediante alineamientos del ORF completo de la proteína de la cápside (CP) del crinivirus CYSDV (C). Para los árboles filogenéticos de NJ, se utilizó el modelo Tamura-3 con 1000 réplicas. Los aislados derivados de la presente investigación se señalan con un asterisco rojo. Los números de acceso de los distintos aislados están indicados. Como secuencias de grupo externo, se emplearon el ADN-A del begomovirus okra mottle virus (OMoV) y la CP del crinivirus lettuce chlorosis virus (LCV).
Figura 3. Árboles filogenéticos correspondientes de los segmentos de ADN-A de begomovirus y al gen CP de crinivirus. Las filogenias Neighbor-Joining (NJ) se construyeron mediante alineamientos múltiples de los segmentos de ADN-A de los begomovirus CuLCrV-CL y WmCSV-CL (paneles A y B, respectivamente), así como mediante alineamientos del ORF completo de la proteína de la cápside (CP) del crinivirus CYSDV (C). Para los árboles filogenéticos de NJ, se utilizó el modelo Tamura-3 con 1000 réplicas. Los aislados derivados de la presente investigación se señalan con un asterisco rojo. Los números de acceso de los distintos aislados están indicados. Como secuencias de grupo externo, se emplearon el ADN-A del begomovirus okra mottle virus (OMoV) y la CP del crinivirus lettuce chlorosis virus (LCV).
  • Vol. 2026, 44(3)
  • Nota Fitopatológica

Aislamiento y caracterización molecular de especies nativas de Trichoderma en sitios con diferente manejo en Chilpancingo, Guerrero, México

PorJatsiris A Meza Silva, Jeiry Toribio Jiménez, Renato León Rodríguez, Nelda Xanath Martínez Galero, Erubiel Toledo Hernández, Roxana Reyes Ríos, Alberto Patricio Hernández*

Recibido: 15/mayo/2026 – Publicado: 29/julio/2026
DOI: https://doi.org/10.18781/R.MEX.FIT.2605-2

Resumen Antecedentes/Objetivo. El género Trichoderma comprende hongos ampliamente reconocidos por su capacidad como agentes de control biológico y promotores del crecimiento vegetal; sin embargo, la información sobre su diversidad molecular en sistemas agrícolas en Guerrero, México, es limitada. El objetivo de este estudio fue aislar e identificar molecularmente especies nativas de Trichoderma presentes en distintos sitios del municipio de Chilpancingo de los Bravo, Guerrero, y analizar su distribución en función de las condiciones de manejo.

Desarrollo experimental. Durante agosto y septiembre de 2025 se instalaron 125 trampas con arroz estéril en cuatro puntos de muestreo: Palo Blanco (parcela agroecológica), Jardín Botánico de la Universidad Autónoma de Guerrero (área de conservación vegetal) y dos áreas de Petaquillas (vegetación natural). Los aislamientos se purificaron mediante cultivo monospórico, se caracterizaron morfológicamente y se identificaron por secuenciación de la región ITS y análisis filogenético de máxima verosimilitud con 1 000 réplicas de bootstrap.

Resultados. Se obtuvieron siete aislamientos de Trichoderma, recuperados únicamente en la parcela agroecológica de Palo Blanco y en el Jardín Botánico de la Universidad Autónoma de Guerrero. El análisis filogenético permitió identificar T. harzianum/Hypocrea lixii, T. asperellum y T. longibrachiatum. En Palo Blanco se identificaron representantes de T. harzianum/H. lixii y T. longibrachiatum, mientras que en el Jardín Botánico se identificaron T. harzianum/H. lixii y T. asperellum. El complejo T. harzianum/H. lixii fue el taxón predominante, representando el 57.1 % de los aislamientos obtenidos.

Conclusión. Se identificaron tres taxones de Trichoderma, con predominio del complejo T. harzianum/Hypocrea lixii (57.1 %), presente en Palo Blanco y el Jardín Botánico. Los resultados amplían el conocimiento sobre su diversidad y distribución en Guerrero, aunque su potencial biotecnológico deberá confirmarse mediante evaluaciones funcionales.

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Cuadro 1. Localización de sitios de muestreo y aislamientos de <em>Trichoderma</em> obtenidos del acuerdo al tipo de manejo del sitio de muestreo.
Cuadro 1. Localización de sitios de muestreo y aislamientos de Trichoderma obtenidos del acuerdo al tipo de manejo del sitio de muestreo.
Cuadro 2. Longitud, número de acceso GenBank y similitud de las secuencias ITS de aislamientos de <em>Trichoderma</em>.
Cuadro 2. Longitud, número de acceso GenBank y similitud de las secuencias ITS de aislamientos de Trichoderma.
Figura 1. Caracterización morfológica representativa de <em>Trichoderma</em>. A) Morfología colonial observada en medio agar papa dextrosa (PDA), mostrando anverso y reverso de la colonia. B) Estructuras microscópicas observadas mediante la técnica de microcultivo y tinción con azul de lactofenol (100x), donde se aprecian hifas septadas, conidióforos ramificados, fiálides y conidios característicos del género <em>Trichoderma</em>.
Figura 1. Caracterización morfológica representativa de Trichoderma. A) Morfología colonial observada en medio agar papa dextrosa (PDA), mostrando anverso y reverso de la colonia. B) Estructuras microscópicas observadas mediante la técnica de microcultivo y tinción con azul de lactofenol (100x), donde se aprecian hifas septadas, conidióforos ramificados, fiálides y conidios característicos del género Trichoderma.
Figura 2. Árbol filogenético inferido a partir de secuencias de la región ITS (ITS1–5.8S–ITS2) de aislamientos de <em>Trichoderma</em> obtenidos en este estudio y secuencias de referencia recuperadas de GenBank. El análisis permitió agrupar los aislamientos dentro de los clados correspondientes a <em>T. longibrachiatum</em>, <em>T. asperelloides</em>, <em>T. asperellum</em>, T<em>. harzianum</em> e <em>Hypocrea lixii</em>. <em>Aspergillus niger</em> fue utilizado como grupo externo (outgroup) debido a su posición filogenética fuera del género <em>Trichoderma</em>, permitiendo el enraizamiento del árbol y la correcta interpretación de las relaciones evolutivas entre los aislamientos analizados. Los valores en los nodos representan el soporte de bootstrap (%) obtenido a partir de 1 000 réplicas.
Figura 2. Árbol filogenético inferido a partir de secuencias de la región ITS (ITS1–5.8S–ITS2) de aislamientos de Trichoderma obtenidos en este estudio y secuencias de referencia recuperadas de GenBank. El análisis permitió agrupar los aislamientos dentro de los clados correspondientes a T. longibrachiatum, T. asperelloides, T. asperellum, T. harzianum e Hypocrea lixii. Aspergillus niger fue utilizado como grupo externo (outgroup) debido a su posición filogenética fuera del género Trichoderma, permitiendo el enraizamiento del árbol y la correcta interpretación de las relaciones evolutivas entre los aislamientos analizados. Los valores en los nodos representan el soporte de bootstrap (%) obtenido a partir de 1 000 réplicas.
  • Vol. 2026, 44(3)
  • Artículo Científico

Coinfección natural de Pospiviroid machoplantae y Begomovirus solanumseveri en jitomate

PorMaría del Carmen Zuñiga Romano, Daniel Leobardo Ochoa Martínez*, Reyna Isabel Rojas Martínez, Sergio Aranda Ocampo, Candelario Ortega Acosta, Erika Janet Zamora Macorra

Recibido: 08/marzo/2026 – Publicado: 27/julio/2026
DOI: https://doi.org/10.18781/R.MEX.FIT.2603-1

Resumen Antecedentes/Objetivo. En un invernadero de alta tecnología ubicado en Atlacomulco, Estado de México, se observaron altas poblaciones de mosca blanca e incidencias de hasta el 90 % de plantas de jitomate con mosaico, clorosis intervenal, deformación, rugosidad y necrosis de la hoja, síntomas asociados a virus o viroides. Con el propósito de conocer a los virus o viroides asociados a estos síntomas, la especie de mosca blanca y si ésta era portadora de alguno de ellos, se realizó un muestreo mensual durante un periodo de dos años, recolectando tejido foliar de plantas e insectos adultos de mosca blanca.

Materiales y Métodos. Se analizaron 347 plantas (211 con síntomas y 136 sin síntomas) con inmunotiras para los virus mancha necrótica de los belenes (Orthotospovirus impatiensnecromaculae), marchitez manchada del jitomate (O. tomatomaculae), mosaico del tabaco (Tobamovirus tabaci), mosaico del jitomate (T. tomatotessellati), mosaico del pepino dulce (Potexvirus pepini) y mosaico del pepino (Cucumovirus CMV) así como por RT-PCR y PCR con oligonucleótidos universales para viroides y virus de los géneros Pospiviroid y Begomovirus, respectivamente. Se extrajo ADN de los insectos y se analizó por PCR con oligonucleótidos específicos que amplifican un fragmento del gen mitocondrial (mtCOI), para identificar la especie de mosca blanca, así como con oligonucleótidos universales para begomovirus para establecer si ésta era portadora de estos virus.

Resultados. Los resultados obtenidos con las inmunotiras fueron negativos. Los fragmentos amplificados por RT-PCR y PCR fueron secuenciados y correspondieron al viroide planta macho del jitomate (Pospiviroid machoplantae) y el virus del enchinamiento severo del jitomate (Begomovirus solanumseveri). El 49.56 % de las plantas analizadas resultaron positivas al pospiviroide, 23.9 % al begomovirus y 8.93 % fueron positivas a ambos. La infección provocada solamente por el viroide fue la única que ocasionó una condición asintomática. Se identificó a Bemisia tabaci como la especie de mosca blanca y se determinó que era portadora de B. solanumseveri.

Conclusiones. Los síntomas de mosaico, clorosis intervenal, deformación y necrosis de la hoja ampollamiento y rugosidad observados en plantas de jitomate estuvieron asociados a la infección individual del viroide planta macho del jitomate (Pospiviroid machoplantae), virus del enchinamiento severo del jitomate y la coinfección de ambos. Se reporta por vez primera la coinfección natural del viroide planta macho con el begomovirus del enchinamiento severo del jitomate (Begomovirus solanumseveri). La existencia de plantas asintomáticas es un factor importante a considerar en la realización de las labores culturales para minimizar la transmisión mecánica del viroide.

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Figura 1. Síntomas observados en plantas de jitomate asociados a begomovirus. A. Mosaico; B. Clorosis intervenal; C. Deformación de la hoja; D. Necrosis; E. Clorosis con ampollamiento; F. Clorosis con deformación de hoja; G. Clorosis con rugosidad; H. Rugosidad con ligero mosaico.
Figura 1. Síntomas observados en plantas de jitomate asociados a begomovirus. A. Mosaico; B. Clorosis intervenal; C. Deformación de la hoja; D. Necrosis; E. Clorosis con ampollamiento; F. Clorosis con deformación de hoja; G. Clorosis con rugosidad; H. Rugosidad con ligero mosaico.
Figura 2. Electroforesis en gel de agarosa al 1 % de productos de PCR. A. Productos de RT-PCR obtenidos con oligonucleótidos universales para viroides del género <em>Pospiviroid</em> (⁓200 pb). Carril M: marcador molecular 100 pb (Promega®); Carril (+): control positivo (muestra positiva a <em>Pospiviroid machoplantae)</em>; Carril (-): control negativo (agua); Carril 1-16: muestras procesadas; B. Productos de PCR obtenidos con oligonucleótidos universales para virus del género <em>Begomovirus</em> (⁓550 pb). Carril M: marcador molecular 100 pb (Promega®); Carril (+): control positivo (muestra positiva a <em>Begomovirus abelsmoschusmexicoense</em>); Carril (-): control negativo (agua); Carril 1-16: muestras procesadas.
Figura 2. Electroforesis en gel de agarosa al 1 % de productos de PCR. A. Productos de RT-PCR obtenidos con oligonucleótidos universales para viroides del género Pospiviroid (⁓200 pb). Carril M: marcador molecular 100 pb (Promega®); Carril (+): control positivo (muestra positiva a Pospiviroid machoplantae); Carril (-): control negativo (agua); Carril 1-16: muestras procesadas; B. Productos de PCR obtenidos con oligonucleótidos universales para virus del género Begomovirus (⁓550 pb). Carril M: marcador molecular 100 pb (Promega®); Carril (+): control positivo (muestra positiva a Begomovirus abelsmoschusmexicoense); Carril (-): control negativo (agua); Carril 1-16: muestras procesadas.
Figura 3. Árbol filogenético construido con el método de Neighbor-Joining a partir de secuencias parciales de <em>Begomovirus solanumseveri</em> y <em>Pospiviroid machoplantae</em> de los aislamientos obtenidos en este estudio. A. Para <em>B. solanumseveri</em> se usó el modelo de Tajima-Nei, con 1,000 réplicas de Bootstrap en el programa MEGAX y como grupo externo se utilizó a <em>Capulavirus medicagonis</em>; B. Para <em>P. machoplantae</em> se usó el modelo de Tamura 3-parameter, con 1,000 réplicas de Bootstrap en el programa MEGAX y como grupo externo se utilizó el <em>Coleviroid alphacolei</em>.
Figura 3. Árbol filogenético construido con el método de Neighbor-Joining a partir de secuencias parciales de Begomovirus solanumseveri y Pospiviroid machoplantae de los aislamientos obtenidos en este estudio. A. Para B. solanumseveri se usó el modelo de Tajima-Nei, con 1,000 réplicas de Bootstrap en el programa MEGAX y como grupo externo se utilizó a Capulavirus medicagonis; B. Para P. machoplantae se usó el modelo de Tamura 3-parameter, con 1,000 réplicas de Bootstrap en el programa MEGAX y como grupo externo se utilizó el Coleviroid alphacolei.
  • Vol. 2026, 44(3)
  • Artículo Científico

Detección de Closterovirus tristezae en limón persa mediante aprendizaje automático y drones

PorMaribel Reyes García, Remigio Anastacio Guzmán Plazola*, Reyna Isabel Rojas Martínez, Victoria Ayala Escobar, Héctor Flores Magdaleno

Recibido: 03/octubre/2025 – Publicado: 17/julio/2026
DOI: https://doi.org/10.18781/R.MEX.FIT.2510-2

Resumen Antecedentes/Objetivo. La producción de limón persa (Citrus latifolia) en México es amenazada por diversas enfermedades. Entre las principales está el virus de la tristeza de los cítricos (Closterovirus tristezae, CTV), que puede infectar plantas de manera asintomática. Esta investigación tuvo como objetivo evaluar el uso de imágenes multiespectrales adquiridas por drones y algoritmos de aprendizaje automático (Machine learning) para identificar plantas enfermas como herramienta para detección temprana y no destructiva

Materiales y Métodos. El estudio se realizó en tres campos agrícolas de Campeche: Champotón y Castamay secciones 1 y 2. Se capturaron imágenes multiespectrales (verde, rojo, borde de rojo e infrarrojo cercano), se extrajeron firmas espectrales, índices de vegetación (NDVI, GNDVI, NDRE, SIPI) y componentes principales (PCA). Se aplicaron clasificadores supervisados: Bosque Aleatorio (RF), Máxima Verosimilitud (MAXLIKE), Máquina de soporte vectorial (SVM) y Perceptrón Multicapa (MLP), en esquemas de clasificación dura y blanda.

Resultados. RF tuvo el mejor desempeño. En clasificación dura, alcanzó precisiones globales del 64 % en Champotón y Castamay Sección 1, y del 65 % en Sección 2, con detección de plantas enfermas entre 65 y 75 %. En clasificación blanda, obtuvo mejores resultados. En Champotón logró 94 % de precisión global y detectó el 79 % de las plantas enfermas. En Castamay Sección 1, 91 y 92 %, respectivamente; y en Sección 2, 99 % de precisión global y 100 % en la detección de enfermedad.

Conclusión. Random Forest mostró el comportamiento más robusto y estable en los distintos escenarios y campos analizados, tanto en clasificación dura (65 %) como en clasificación blanda (94 %), lo que confirma su capacidad para manejar relaciones no lineales y la variabilidad espectral en ambientes agrícolas reales. El uso de imágenes multiespectrales junto con algoritmos de aprendizaje automático, especialmente RF en clasificación blanda, representa una herramienta efectiva para el diagnóstico temprano de CTV en limón persa.

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Cuadro 1. Resumen estadístico de los valores espectrales por banda y clase en los tres campos evaluados en plantaciones comerciales de limón persa.
Cuadro 1. Resumen estadístico de los valores espectrales por banda y clase en los tres campos evaluados en plantaciones comerciales de limón persa.
Cuadro 2. Valores medios de las variables derivadas de las imágenes (bandas originales, componentes principales e índices de vegetación) en los tres campos analizados en plantaciones comerciales de limón persa.
Cuadro 2. Valores medios de las variables derivadas de las imágenes (bandas originales, componentes principales e índices de vegetación) en los tres campos analizados en plantaciones comerciales de limón persa.
Figura 1. Curvas de densidad espectral por banda, comparación entre plantas sanas y enfermas asociadas a <em>Closterovirus tristezae</em>, CTV en el campo Champotón, Campeche.
Figura 1. Curvas de densidad espectral por banda, comparación entre plantas sanas y enfermas asociadas a Closterovirus tristezae, CTV en el campo Champotón, Campeche.
Figura 2. Curvas de densidad espectral por banda, comparación entre plantas sanas y enfermas asociadas a <em>Closterovirus tristezae</em>, CTV en el campo Castamay Sección 1, Campeche.
Figura 2. Curvas de densidad espectral por banda, comparación entre plantas sanas y enfermas asociadas a Closterovirus tristezae, CTV en el campo Castamay Sección 1, Campeche.
Figura 3. Curvas de densidad espectral por banda, comparación entre plantas sanas y enfermas asociadas a <em>Closterovirus tristezae</em>, CTV en el campo Castamay Sección 2, Campeche.
Figura 3. Curvas de densidad espectral por banda, comparación entre plantas sanas y enfermas asociadas a Closterovirus tristezae, CTV en el campo Castamay Sección 2, Campeche.
Figura 4. Clasificación dura en los tres campos de cultivo. Campo Champotón: A1) Precisión global considerando todos los píxeles clasificados correctamente; A2) Porcentaje de distribución de píxeles por clase (plantas sanas y enfermas). Castamay Sección 1: B1) Precisión global considerando todos los píxeles clasificados correctamente; B2) Porcentaje de distribución de píxeles por clase (plantas sanas y enfermas). Castamay Sección 2: C1) Precisión global considerando todos los píxeles clasificados correctamente; C2) Porcentaje de distribución de píxeles por clase (plantas sanas y enfermas).
Figura 4. Clasificación dura en los tres campos de cultivo. Campo Champotón: A1) Precisión global considerando todos los píxeles clasificados correctamente; A2) Porcentaje de distribución de píxeles por clase (plantas sanas y enfermas). Castamay Sección 1: B1) Precisión global considerando todos los píxeles clasificados correctamente; B2) Porcentaje de distribución de píxeles por clase (plantas sanas y enfermas). Castamay Sección 2: C1) Precisión global considerando todos los píxeles clasificados correctamente; C2) Porcentaje de distribución de píxeles por clase (plantas sanas y enfermas).
Figura 5. Campo Champotón en Campeche, México con cultivo de limón persa. Clasificación blanda de los mejores resultados en las escalas de probabilidad por algoritmo. A) Imagen RGB del campo tomada con dron del cultivo de limón persa; B) Sitio de entrenamiento, datos obtenidos de los análisis de campo mediante inmunotiras; C) RF con umbral de 56 %; D) MAXLIKE con umbral de 50 %; E) SVM-RBF con umbral de 29 %.
Figura 5. Campo Champotón en Campeche, México con cultivo de limón persa. Clasificación blanda de los mejores resultados en las escalas de probabilidad por algoritmo. A) Imagen RGB del campo tomada con dron del cultivo de limón persa; B) Sitio de entrenamiento, datos obtenidos de los análisis de campo mediante inmunotiras; C) RF con umbral de 56 %; D) MAXLIKE con umbral de 50 %; E) SVM-RBF con umbral de 29 %.
Figura 6. Castamay Sección 1 en Campeche, México con cultivo de limón persa. Clasificación blanda de los mejores resultados en las escalas de probabilidad por algoritmo. A) Imagen RGB del campo tomada con dron del cultivo de limón persa; B) Sitio de entrenamiento, datos obtenidos de los análisis de campo a través de las inmunotiras; C) RF con umbral de 50 %; D) SVM-RBF con umbral de 50 %; E) SVM-LIN con umbral de 50 %; F) SVM-SIG con umbral 50 %; G) MAXLIKE con umbral de 50 %; H) SVM-POLY con umbral de 50 %.
Figura 6. Castamay Sección 1 en Campeche, México con cultivo de limón persa. Clasificación blanda de los mejores resultados en las escalas de probabilidad por algoritmo. A) Imagen RGB del campo tomada con dron del cultivo de limón persa; B) Sitio de entrenamiento, datos obtenidos de los análisis de campo a través de las inmunotiras; C) RF con umbral de 50 %; D) SVM-RBF con umbral de 50 %; E) SVM-LIN con umbral de 50 %; F) SVM-SIG con umbral 50 %; G) MAXLIKE con umbral de 50 %; H) SVM-POLY con umbral de 50 %.
Figura 7. Castamay Sección 2, en Campeche, México con cultivo de limón persa. Clasificación blanda de los mejores resultados en las escalas de probabilidad por algoritmo. A) Imagen RGB del campo tomada con dron del cultivo de limón persa; B) Sitio de entrenamiento, datos obtenidos de los análisis de campo a través de las inmunotiras; C) Resultados de Random Forest a un umbral de membresía (UM) de 50 %; D) SVM-RBF con UM de 50 %; E) SVM-SIG con UM de 50 %; F) SVM-LIN con UM de 50 %; G) MAXLIKE con UM de 50%; H) SVM-POLY con UM de 51 %.
Figura 7. Castamay Sección 2, en Campeche, México con cultivo de limón persa. Clasificación blanda de los mejores resultados en las escalas de probabilidad por algoritmo. A) Imagen RGB del campo tomada con dron del cultivo de limón persa; B) Sitio de entrenamiento, datos obtenidos de los análisis de campo a través de las inmunotiras; C) Resultados de Random Forest a un umbral de membresía (UM) de 50 %; D) SVM-RBF con UM de 50 %; E) SVM-SIG con UM de 50 %; F) SVM-LIN con UM de 50 %; G) MAXLIKE con UM de 50%; H) SVM-POLY con UM de 51 %.
  • Vol. 2026, 44(3)
  • Nota Fitopatológica

Actividad antifúngica in vitro y sensibilidad de aislados de Neopestalotiopsis rosae frente a extractos de Baccharis salicifolia y Fouquieria splendens

PorJesús Eduardo Ramírez Méndez, Meralida Bartolón Pérez, Francisco Daniel Hernández Castillo, Yisa María Ochoa Fuentes, Laura Castro Rosalez, Marco Antonio Tucuch Pérez*

Recibido: 19/enero/2026 – Publicado: 13/julio/2026
DOI: https://doi.org/10.18781/R.MEX.FIT.2601-3

Resumen Antecedentes/Objetivo. En fresa, Neopestalotiopsis rosae causa pudriciones en corona y raíz, afectando el rendimiento del cultivo. El objetivo del presente estudio fue analizar la sensibilidad de cuatro cepas N. rosae (466, 323, FREC y 372) a extractos vegetales (EVs) de Baccharis salicifolia y Fouquieria splendens, y determinar su actividad antifúngica sobre las cepas.

Desarrollo experimental. Se llevó a cabo un análisis fitoquímico mediante técnicas cualitativas. Posteriormente, la actividad antifúngica de los EVs se realizó mediante bioensayos in vitro utilizando la técnica de microdilución, con dosis de 3.9 a 2 000 mg L⁻¹ (10 dosis), determinándose las concentraciones inhibitorias al 50 y 90 % (CI₅₀-₉₀), así como un ANOVA seguido de una prueba de comparación de medias de Tukey (p ≤ 0.05). Finalmente, se evaluaron los efectos de los EVs sobre las estructuras celulares fúngicas.

Resultados. Respecto a los fitoquímicos, ambos EVs presentaron fenoles, saponinas y taninos. En la evaluación de la actividad antifúngica, los aislados 323 y FREC de N. rosae fueron los más sensibles, ya que mostraron inhibición total con ambos EVs a 250 mg L⁻¹. En contraste, los aislados 372 y 466 requirieron concentraciones mayores para lograr la inhibición completa. En particular, B. salicifolia fue más efectiva sobre las cepas 466 y 372 a 1 000 mg L⁻¹, mientras que F. splendens necesitó hasta 2 000 mg L⁻¹ para inhibir completamente a la cepa 466. En cuanto al daño estructural inducido por los EV, el aislado 323 mostró la mayor sensibilidad a partir de 250 mg L⁻¹, evidenciada por la inhibición de la germinación de conidios y alteraciones morfológicas severas, como colapso celular y deshidratación. Los aislados FREC y 372 presentaron engrosamiento micelial a 500 mg L⁻¹, mientras que el aislado 466 mostró la menor sensibilidad, sin daño estructural evidente aún a dicha concentración.

Conclusión. Los extractos de B. salicifolia y F. splendens contienen diversos fitoquímicos. En relación con los aislados de N. rosae, los aislados 323 y FREC mostraron mayor sensibilidad frente a los EVs, con porcentaje inhibición de 100 % a dosis de 250 mg L⁻¹, además de daño estructural por parte de los extractos, lo que respalda su potencial para el manejo de N. rosae. Sin embargo, se requieren estudios bajo condiciones de invernadero y campo para validar su eficacia.

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Cuadro 1. Identificación de fitoquímicos presentes en extractos metanólicos de <em>Baccharis salicifolia</em> y <em>Fouquieria splendens</em> por métodos colorimétricos.
Cuadro 1. Identificación de fitoquímicos presentes en extractos metanólicos de Baccharis salicifolia y Fouquieria splendens por métodos colorimétricos.
Cuadro 2. Concentración de inhibición al 50 y 90 % (CI<sub>50-90</sub>) de aislados de <em>Neopestalotiopsis rosae</em> tratados con extractos de <em>Baccharis salicifolia</em> y <em>Fouquieria splendens</em>.
Cuadro 2. Concentración de inhibición al 50 y 90 % (CI50-90) de aislados de Neopestalotiopsis rosae tratados con extractos de Baccharis salicifolia y Fouquieria splendens.
Figura 1. Porcentaje de inhibición de aislados de <em>Neopestalotiopsis rosae</em> tratados con extracto de <em>Baccharis salicifolia</em>. * Los datos identificados con la misma letra son estadísticamente similares.
Figura 1. Porcentaje de inhibición de aislados de Neopestalotiopsis rosae tratados con extracto de Baccharis salicifolia. * Los datos identificados con la misma letra son estadísticamente similares.
Figura 2. Porcentaje de inhibición de aislados de <em>Neopestalotiopsis rosae</em> tratados con extracto de <em>Fouquieria splendens</em>. * Los datos identificados con la misma letra son estadísticamente similares.
Figura 2. Porcentaje de inhibición de aislados de Neopestalotiopsis rosae tratados con extracto de Fouquieria splendens. * Los datos identificados con la misma letra son estadísticamente similares.
Figura 3. Efecto del extracto de <em>Baccharis salicifolia</em> sobre las estructuras fúngicas de aislados de <em>Neopestalotiopsis rosae</em>. A1–A2: control absoluto. B1–B5: 466 (2 000, 1 000, 500, 250 y 125 mg L⁻¹); C1–C5: 323 (2 000, 1 000, 500, 250 y 125 mg L⁻¹); D1–D5: FREC (2 000, 1 000, 500, 250 y 125 mg L⁻¹); E1–E5: 372 (2 000, 1 000, 500, 250 y 125 mg L⁻¹). Las observaciones microscópicas se realizaron a 10 y 40X.
Figura 3. Efecto del extracto de Baccharis salicifolia sobre las estructuras fúngicas de aislados de Neopestalotiopsis rosae. A1–A2: control absoluto. B1–B5: 466 (2 000, 1 000, 500, 250 y 125 mg L⁻¹); C1–C5: 323 (2 000, 1 000, 500, 250 y 125 mg L⁻¹); D1–D5: FREC (2 000, 1 000, 500, 250 y 125 mg L⁻¹); E1–E5: 372 (2 000, 1 000, 500, 250 y 125 mg L⁻¹). Las observaciones microscópicas se realizaron a 10 y 40X.
Figura 4. Efecto del extracto de <em>Fouquieria splendens</em> sobre las estructuras fúngicas de aislados de <em>Neopestalotiopsis rosae</em>. A1–A2: control absoluto. B1–B5: 466 (2 000, 1 000, 500, 250 y 125 mg L⁻¹); C1–C5: 323 (2 000, 1 000, 500, 250 y 125 mg L⁻¹); D1–D5: FREC (2 000, 1 000, 500, 250 y 125 mg L⁻¹); E1–E5: 372 (2 000, 1 000, 500, 250 y 125 mg L⁻¹). Las observaciones microscópicas se realizaron a 10, 40 y 100X.
Figura 4. Efecto del extracto de Fouquieria splendens sobre las estructuras fúngicas de aislados de Neopestalotiopsis rosae. A1–A2: control absoluto. B1–B5: 466 (2 000, 1 000, 500, 250 y 125 mg L⁻¹); C1–C5: 323 (2 000, 1 000, 500, 250 y 125 mg L⁻¹); D1–D5: FREC (2 000, 1 000, 500, 250 y 125 mg L⁻¹); E1–E5: 372 (2 000, 1 000, 500, 250 y 125 mg L⁻¹). Las observaciones microscópicas se realizaron a 10, 40 y 100X.
  • Vol. 2026, 44(3)
  • Nota Fitopatológica

Primer reporte de Pseudomonas putida afectando Eryngium spp., estudio de caso en Ixtapan de la Sal, Estado de México

PorSantiago Vergara Pineda, Paola S Puga Guzmán, Daniel Mendoza Jiménez, José Antonio Cervantes Chávez*

Recibido: 09/marzo/2026 – Publicado: 22/junio/2026
DOI: https://doi.org/10.18781/R.MEX.FIT.2603-2

Resumen Antecedentes/Objetivo. Especies de plantas del género Eryngium son nativas de México, su cultivo como flor ornamental de corte es reciente, por lo que se desconocen en gran medida los patógenos que las afectan. En este sentido, un productor se dio a la tarea de innovar usando esta planta para flor cortada, enfrentándose con una enfermedad de pudrición que diezmó su cultivo en campo por lo que el objetivo de este trabajo fue aislar, identificar y caracterizar el agente causante de la pudrición blanda de Eryngium spp. en el tallo.

Desarrollo experimental. Plantas con síntomas de pudrición se recolectaron en una parcela cultivada en el municipio de Ixtapan de la Sal, Estado de México. Diez plantas con síntomas se mantuvieron en cámara húmeda, de las cuales se aisló una bacteria que se identificó con análisis bioquímicos. Para su identificación molecular, se realizó la extracción de ADN para amplificar el gen ribosomal 16S con los iniciadores 27F y 1492R. Los productos de PCR se enviaron al laboratorio de genómica avanzada del LANGEBIO del CINVESTAV Irapuato, Guanajuato. Así, mismo, se realizó los postulados de Koch en 20 plántulas de Eryngium spp. asintomáticos, donde se inocularon por punción de masa bacteriana en la base de las hojas, en la región distal del peciolo y basal de las nervaduras.

Resultados. De acuerdo al análisis bioquímico, se determinó la bacteria perteneciente al género Pseudomonas, el análisis molecular reveló que la identidad de la bacteria correspondió a Pseudomonas putida. En los Postulados de Koch, se observó el 100 % de síntomas asociadas a pudrición blanda.

Conclusión. Se identificó a Pseudomonas putida como el agente causal de la pudrición blanda en Eryngium spp. En el postulado de Koch, se confirmó su patogenicidad en plántulas de Eryngium spp. Este es el primer reporte de P. putida causando pudrición en Eryngium spp.

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Figura 1. Relación filogenética de la cepa bacteriana 1347 y especies de referencia del género <em>Pseudomonas</em>, teniendo una correlación con <em>Pseudomonas putida</em> (MF462927, PP095708). El árbol filogenético se construyó utilizando el método de Máxima Verosimilitud (Maximum Likelihood) basado en secuencias del gen 16S del DNA ribosomal. Los valores numéricos en los nodos internos representan el soporte de bootstrap a partir de 100 000 réplicas. Las cepas <em>P. brassicacearum</em> AF100322 y <em>P. alabamensis</em> PQ115154 se emplearon como grupo externo.
Figura 1. Relación filogenética de la cepa bacteriana 1347 y especies de referencia del género Pseudomonas, teniendo una correlación con Pseudomonas putida (MF462927, PP095708). El árbol filogenético se construyó utilizando el método de Máxima Verosimilitud (Maximum Likelihood) basado en secuencias del gen 16S del DNA ribosomal. Los valores numéricos en los nodos internos representan el soporte de bootstrap a partir de 100 000 réplicas. Las cepas P. brassicacearum AF100322 y P. alabamensis PQ115154 se emplearon como grupo externo.
Figura 2. Fases de desarrollo de la pudrición blanda en <em>Eryngium</em> sp. en cultivo en campo. A) Haz de la hoja mostrando necrosis en nervaduras centrales; B) Envés de la misma hoja con necrosis severa; C) Peciolos de las hojas con estrías necróticas; D) Marchitez y muerte de hojas; E) Marchitez de la planta completa.
Figura 2. Fases de desarrollo de la pudrición blanda en Eryngium sp. en cultivo en campo. A) Haz de la hoja mostrando necrosis en nervaduras centrales; B) Envés de la misma hoja con necrosis severa; C) Peciolos de las hojas con estrías necróticas; D) Marchitez y muerte de hojas; E) Marchitez de la planta completa.
Figura 3. Pudrición blanda en el tallo y raíz principal de <em>Eryngium</em> spp. asociadas a bacterias.
Figura 3. Pudrición blanda en el tallo y raíz principal de Eryngium spp. asociadas a bacterias.
Figura 4. Postulados de Koch en plántula de <em>Eryngium</em> spp. inoculadas con cepa bacteriana 1347. A) Lesiones acuosas en el sitio de inoculación por punción en hoja con proceso infectivo al día siguiente; B) Progresión de severidad al segundo día; C) Planta muerta al décimo día; D) Planta control.
Figura 4. Postulados de Koch en plántula de Eryngium spp. inoculadas con cepa bacteriana 1347. A) Lesiones acuosas en el sitio de inoculación por punción en hoja con proceso infectivo al día siguiente; B) Progresión de severidad al segundo día; C) Planta muerta al décimo día; D) Planta control.
  • Vol. 2026, 44(2)
  • Artículo Científico

Efecto in vitro e in planta del silicio y fosfitos en control de Fusarium oxysporum f. sp. lycopersici causante de la marchitez en tomate

PorMagda Rocío Gómez Marroquín*, Sandra L Carmona, Diana Burbano David, Andrea del Pilar Villarreal, Mauricio Soto Suárez, Adriana González Almario

Recibido: 15/junio/2025 – Publicado: 29/abril/2026
DOI: https://doi.org/10.18781/R.MEX.FIT.2401-3

Resumen Antecedentes/Objetivo. Las sustancias bioactivas como fosfitos y silicio representan una alternativa promisoria para el manejo de la marchitez vascular del tomate, debido a su potencial para inhibir el crecimiento del patógeno e inducir mecanismos de defensa en la planta. El objetivo de este estudio fue evaluar el efecto de tres fuentes de fosfitos y una fuente de silicio sobre el aislamiento Fol59 de Fusarium oxysporum f. sp. lycopersici raza 2 mediante ensayos in vitro e in planta.

Materiales y Métodos. En condiciones in vitro, se determinó el porcentaje de inhibición del crecimiento radial (PICR) del aislamiento Fol59 de Fusarium oxysporum f. sp. lycopersici raza 2 en medio PDA suplementado con cada sustancia bioactiva en concentraciones entre 10 y 20 000 ppm, bajo un diseño completamente al azar (4 × 9), con cuatro tratamientos y nueve concentraciones, cinco réplicas técnicas y tres biológicas. En condiciones in planta, se evaluó el Área Bajo la Curva del Progreso de la Enfermedad (ABCPE) y el porcentaje de eficacia mediante un diseño completamente al azar (4 × 2), con cuatro tratamientos y dos concentraciones, considerando cuatro condiciones experimentales: control, control inoculado, tratamientos sin inoculación y tratamientos inoculados. Se utilizaron 20 unidades experimentales por tratamiento y tres réplicas biológicas.

Resultados. A los siete días, las sustancias bioactivas redujeron el crecimiento radial del hongo entre 70 y 100 %, con diferencias significativas entre las concentraciones. La mayor inhibición se registró con silicio a 10 000 ppm (100 %), seguido de fosfito de calcio a 2 000 ppm (99.4 %) y fosfito de potasio a 20 000 ppm (99 %). En ensayos in planta, a los 14 días después de inoculación, el control presentó una incidencia del 100 % y una severidad del 98 %. En contraste, el tratamiento con fosfito de potasio (KPhi1) a 2 000 ppm redujo la severidad al 56 %, lo que representa una eficacia del 42 % en comparación con el control.

Conclusión. Los fosfitos y el silicio mostraron un efecto inhibitorio sobre el crecimiento micelial del hongo bajo condiciones in vitro. En ensayos in planta, el fosfito de potasio, a 2 000 ppm fue el tratamiento más eficaz, reduciendo severidad de la marchitez vascular causada por Fol59.

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Cuadro 1. Sustancias bioactivas evaluadas en ensayos <em>in vitro</em> e <em>in planta</em> en tomate (<em>Solanum lycopersicum</em>).
Cuadro 1. Sustancias bioactivas evaluadas en ensayos in vitro e in planta en tomate (Solanum lycopersicum).
Cuadro 2. Concentraciones de sustancias bioactivas evaluadas frente a <em>Fusarium oxysporum</em> f. sp. <em>lycopersici</em> (<em>Fol59</em>) bajo condiciones <em>in vitro</em>.
Cuadro 2. Concentraciones de sustancias bioactivas evaluadas frente a Fusarium oxysporum f. sp. lycopersici (Fol59) bajo condiciones in vitro.
Cuadro 3. Concentraciones de sustancias bioactivas evaluadas en plantas de tomate bajo condiciones sin inoculación e inoculadas con <em>Fusarium oxysporum</em> f. sp. <em>lycopersici</em>.
Cuadro 3. Concentraciones de sustancias bioactivas evaluadas en plantas de tomate bajo condiciones sin inoculación e inoculadas con Fusarium oxysporum f. sp. lycopersici.
Cuadro 4. Porcentaje de inhibición de crecimiento radial (PICR) de <em>Fol59</em> usando fosfitos y silicio (KPhi1, KPhi2, CaPhi y Si) a diferentes concentraciones bajo condiciones <em>in vitro</em>.
Cuadro 4. Porcentaje de inhibición de crecimiento radial (PICR) de Fol59 usando fosfitos y silicio (KPhi1, KPhi2, CaPhi y Si) a diferentes concentraciones bajo condiciones in vitro.
Cuadro 5. Porcentaje de incidencia y severidad causada por <em>Fusarium oxysporum</em> f. sp. <em>lycopersici</em> (<em>Fol59</em>) en plantas de tomate a los 14 días después de inoculación (ddi).
Cuadro 5. Porcentaje de incidencia y severidad causada por Fusarium oxysporum f. sp. lycopersici (Fol59) en plantas de tomate a los 14 días después de inoculación (ddi).
Figura 1. Efecto de diferentes concentraciones de fosfitos y silicio sobre el crecimiento micelial de <em>Fol59</em>, a los siete días de incubación.
Figura 1. Efecto de diferentes concentraciones de fosfitos y silicio sobre el crecimiento micelial de Fol59, a los siete días de incubación.
Figura 2. Área bajo la curva del progreso de la enfermedad (ABCPE) a los 14 días después de la inoculación, expresada como severidad en plantas de tomate previamente tratadas con sustancias bioactivas (KPhi, CaPhi y Si) e inoculadas con el aislamiento <em>Fol59</em>. Barras con la misma letra no presentan diferencias significativas según la prueba de Tukey (p ≤ 0.05).
Figura 2. Área bajo la curva del progreso de la enfermedad (ABCPE) a los 14 días después de la inoculación, expresada como severidad en plantas de tomate previamente tratadas con sustancias bioactivas (KPhi, CaPhi y Si) e inoculadas con el aislamiento Fol59. Barras con la misma letra no presentan diferencias significativas según la prueba de Tukey (p ≤ 0.05).
Figura 3. Síntomas de marchitez vascular en plantas de tomate a los 14 días después de la inoculación (ddi). A) Plantas no inoculadas, incluyendo el control y tratamientos con sustancias bioactivas; B) Plantas inoculadas con <em>Fol59</em>, incluyendo el control inoculado y tratamientos con sustancias bioactivas.
Figura 3. Síntomas de marchitez vascular en plantas de tomate a los 14 días después de la inoculación (ddi). A) Plantas no inoculadas, incluyendo el control y tratamientos con sustancias bioactivas; B) Plantas inoculadas con Fol59, incluyendo el control inoculado y tratamientos con sustancias bioactivas.
  • Vol. 2026, 44(2)
  • Nota Fitopatológica

Potencial antagonista de rizobacterias nativas de Parkinsonia aculeata sobre Fusarium spp. asociado a maíces criollos del Bajío, México

PorLeandris Argentel Martínez, Ofelda Peñuelas Rubio*, Francisco Cervantes Ortíz, Joe Luis Arias Moscoso, Francisco Cadena Cadena, Pamela Romo Rodríguez, Lorenzo Pérez López, Rosario Alicia Fierro Coronado

Recibido: 15/enero/2026 – Publicado: 29/abril/2026
DOI: https://doi.org/10.18781/R.MEX.FIT.2601-2

Resumen Antecedentes/Objetivo. El género Fusarium comprende algunos de los hongos fitopatógenos más importantes que afectan al cultivo de maíz, ya que ocasionan enfermedades como la pudrición de la raíz, tallo y mazorca, que afectan la productividad agrícola de este cultivo. En la búsqueda de alternativas agrobiotecnológicas para el control de este hongo, se desarrolló el presente estudio para evaluar el potencial antagonista de rizobacterias de Parkinsonia aculeata contra cepas de Fusarium spp. asociadas a maíces criollos del Bajío, México.

Desarrollo experimental. Se emplearon dos cepas de Fusarium spp. (MC-03 y MC-05), aisladas de raíces de maíces nativos del Bajío, México con síntomas de Fusariosis. Estos hongos se confrontaron in vitro con nueve rizobacterias de P. aculeata: Enterobacter cloacae (BA1), Priestia megaterium (BA4 y BA-7B), Sinomonas halotolerans (BA10-B), BP5 (Staphylococcus warneri), BP6 (P. endophytica), Bacillus subtilis (TP1 y TP2) y S. hominis (TM6). Se realizó una caracterización micro-macroscópica de las cepas fúngicas y bioquímica para las rizobacterias. Se determinó la inhibición del crecimiento radial de los aislados fúngicos mediante confrontaciones duales hongo-rizobacterias por triplicado. Se empleó un diseño completamente aleatorizado, analizando los datos obtenidos en el software STATISTICA mediante una ANOVA basada en un modelo lineal de efectos fijos y una prueba comparación de medias por DMS (p>0.05).

Resultados. A excepción de P. endophytica (BP6), todas las rizobacterias presentaron actividad enzimática relacionada con mecanismos de antagonismo fúngico. B. subtilis (TP1) produjo gluacanasas, lipasas y proteasas. La caracterización micro y macroscópica de las cepas fúngicas indicó que pertenecen a Fusarium spp. En la confrontación rizobacterias- MC-03, las cepas bacterianas de B. subtilis (TP1 y TP2) fueron estadísticamente iguales y lograron la mayor inhibición del crecimiento micelial (23 %). Con la cepa fúngica MC-05, P. endophytica (BP6) y S. hominis (TM6) fueron estadísticamente superiores al resto de las rizobacterias al momento inhibir el crecimiento micelial en 17 %, seguidas por las dos cepas de B. subtilis (TP1 y TP2) que inhibieron el 10 y 17 % respectivamente.

Conclusión. Existió variabilidad significativa en la respuesta del crecimiento micelial de los hongos ante las rizobacterias. B. subtilis (TP1 y TP2), S. hominis (TM6) y P. endophytica (BP6), presentaron un efecto antagónico, ya que inhibieron el crecimiento micelial de las cepas de Fusarium spp. hasta en 23 % respecto al control absoluto y comercial. El presente estudio establece las bases científicas preliminares para la obtención de un biofungicida con capacidades específicas de inhibición de los hongos estudiados.

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Cuadro 1. Caracterización bioquímica de las rizobacterias aisladas de palo verde (<em>Parkinsonia aculeata</em>).
Cuadro 1. Caracterización bioquímica de las rizobacterias aisladas de palo verde (Parkinsonia aculeata).
Figura 1. Diagrama del ensayo de confrontación dual hongo-rizobacteria. a) Distribución de los microorganismos en la placa Petri; b-c) Características macroscópicas de las nueve bacterias [<em>E. cloacae</em> (BA1), <em>P. megaterium</em> (BA4 y BA7B), <em>S. halotolerans</em> (BA10B), <em>S. warneri</em> (BP5), <em>P. endophytica</em> (BP6), <em>S. hominis</em> (TM6), <em>B. subtilis</em> (TP1 y TP2)] y dos hongos (MC-03 y MC-05), respectivamente.
Figura 1. Diagrama del ensayo de confrontación dual hongo-rizobacteria. a) Distribución de los microorganismos en la placa Petri; b-c) Características macroscópicas de las nueve bacterias [E. cloacae (BA1), P. megaterium (BA4 y BA7B), S. halotolerans (BA10B), S. warneri (BP5), P. endophytica (BP6), S. hominis (TM6), B. subtilis (TP1 y TP2)] y dos hongos (MC-03 y MC-05), respectivamente.
Figura 2. Caracterización morfológica de cepas fúngicas e <em>Fusarium</em>. A) Características macroscópicas de las cepas fúngicas: vistas de anverso (superior) y reverso (inferior) de placas Petri con medio PDA de 10 días después de la siembra; B y C) Estructuras miceliales y conidiales observadas mediante microscopía óptica a 40 y 100X (con aceite de inmersión), a partir de microcultivos de 5 días después de la siembra y teñidos con azul de lactofenol (Riddell, 1950).
Figura 2. Caracterización morfológica de cepas fúngicas e Fusarium. A) Características macroscópicas de las cepas fúngicas: vistas de anverso (superior) y reverso (inferior) de placas Petri con medio PDA de 10 días después de la siembra; B y C) Estructuras miceliales y conidiales observadas mediante microscopía óptica a 40 y 100X (con aceite de inmersión), a partir de microcultivos de 5 días después de la siembra y teñidos con azul de lactofenol (Riddell, 1950).
Figura 3. Crecimiento micelial presentado por las cepas de <em>Fusarium</em> spp. MC-03 (a) y MC-05 (b) durante las confrontaciones duales con bacterias antagonistas. En el eje de las Y se presentan los tratamientos: CA: control absoluto; CC: control comercial; bacterias antagonistas: BA1 (<em>E. cloacae</em>), BA4 y BA7B (<em>P. megaterium</em>), BA10B (<em>Sinomonas halotolerans</em>), BP5 (<em>S. warneri</em>), BP6 (<em>P. endophytica</em>), TM6 (<em>S. hominis</em>), TP1 y TP2 (<em>B. subtilis</em>).
Figura 3. Crecimiento micelial presentado por las cepas de Fusarium spp. MC-03 (a) y MC-05 (b) durante las confrontaciones duales con bacterias antagonistas. En el eje de las Y se presentan los tratamientos: CA: control absoluto; CC: control comercial; bacterias antagonistas: BA1 (E. cloacae), BA4 y BA7B (P. megaterium), BA10B (Sinomonas halotolerans), BP5 (S. warneri), BP6 (P. endophytica), TM6 (S. hominis), TP1 y TP2 (B. subtilis).
  • Vol. 2026, 44(2)
  • Nota Fitopatológica

Detección de un potencial alphanucleorhabdovirus infectando Carica papaya en Costa Rica

PorLaura Garita Salazar, William Villalobos Muller, Mauricio Montero Astúa, Antonio Bogantes Arias, Teresita Coto Morales, Izayana Sandoval Carvajal, Lisela Moreira Carmona*

Recibido: 11/febrero/2026 – Publicado: 29/abril/2026
DOI: https://doi.org/10.18781/R.MEX.FIT.2602-3

Resumen Antecedentes/Objetivo. Clorosis foliar, entrenudos cortos, y pecíolos curveados con estrías color púrpura se observan en plantaciones de papaya (Carica papaya) en las regiones Norte y Atlántica en Costa Rica desde el 2014. La identificación de un presunto virus de plantas asociado con estos síntomas fue el objetivo de esta investigación.

Desarrollo experimental. El tejido vegetal fue evaluado mediante ELISA (cuatro virus de plantas y el género potyvirus), microscopia electrónica de transmisión (MET), RT-PCR (con iniciadores universales para virus de plantas), secuenciación y análisis filogenéticos.

Resultados. Todas las pruebas de ELISA resultaron negativas. Mediante MET, se observaron sólo en las plantas sintomáticas, partículas virales con forma de bala, éstas dentro de membranas en los núcleos y el citoplasma. Amplicones de 900 pb se obtuvieron consistentemente en las muestras sintomáticas usando iniciadores degenerados para rhabdovirus de plantas. Las secuencias nucleotídicas mostraron similitudes entre 95.6 y 96.8 % con un alphanucleorhabdovirus (Alphanucleorhabdovirus, Rhabdoviridae) tentativo que infecta papaya.

Conclusión. Este es el primer reporte de un alphanucleorhabdovirus tentativo asociado con plantas sintomáticas de papaya mostrando la enfermedad del "pecíolo rayado", como se le conoce localmente en Costa Rica, pero los postulados de Koch deben ser cumplidos y el vector identificado.

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Cuadro 1. Iniciadores y perfiles del termociclado empleados para detectar virus ARN en las plantas de <em>Carica papaya</em> analizadas en este estudio.
Cuadro 1. Iniciadores y perfiles del termociclado empleados para detectar virus ARN en las plantas de Carica papaya analizadas en este estudio.
Cuadro 2. Resumen de las pruebas realizadas y resultados obtenidos de las muestras foliares de plantas de <em>Carica papaya</em>, sintomáticas y asintomáticas, recolectadas en Costa Rica para determinar si algún virus está asociado a la enfermedad del
Cuadro 2. Resumen de las pruebas realizadas y resultados obtenidos de las muestras foliares de plantas de Carica papaya, sintomáticas y asintomáticas, recolectadas en Costa Rica para determinar si algún virus está asociado a la enfermedad del "pecíolo rayado".
Figura 1. Alteraciones morfológicas observadas en plantas de <em>Carica papaya</em> con la enfermedad de "pecíolo rayado" en Costa Rica. <strong>A</strong>) Una planta sintomática (flecha) con los pecíolos curvos hacia abajo, reducción del número de hojas en el meristemo apical, y cese del cuajado de frutos. Adyacente (levemente atrás a la derecha) dos plantas sanas mostrando abundante desarrollo de frutos y la típica arquitectura foliar; <strong>B</strong>) Vista detallada de la sección apical de una planta sintomática que muestra reducción foliar en el meristemo, curvatura de pecíolos, y escaso cuajado de frutos, al fondo (izquierda) una planta sana con producción normal de frutos; <strong>C</strong>) Vista detallada de la sección superior de una planta sana; <strong>D</strong>) Pecíolos de una planta enferma con estrías de color púrpura; <strong>E</strong>) Comparación entre pecíolos de plantas sintomáticas (arriba) y sanas (abajo).
Figura 1. Alteraciones morfológicas observadas en plantas de Carica papaya con la enfermedad de "pecíolo rayado" en Costa Rica. A) Una planta sintomática (flecha) con los pecíolos curvos hacia abajo, reducción del número de hojas en el meristemo apical, y cese del cuajado de frutos. Adyacente (levemente atrás a la derecha) dos plantas sanas mostrando abundante desarrollo de frutos y la típica arquitectura foliar; B) Vista detallada de la sección apical de una planta sintomática que muestra reducción foliar en el meristemo, curvatura de pecíolos, y escaso cuajado de frutos, al fondo (izquierda) una planta sana con producción normal de frutos; C) Vista detallada de la sección superior de una planta sana; D) Pecíolos de una planta enferma con estrías de color púrpura; E) Comparación entre pecíolos de plantas sintomáticas (arriba) y sanas (abajo).
Figura 2. Núcleo de una célula de parénquima de una planta sintomática de <em>Carica papaya</em> con la enfermedad de "pecíolo rayado" observada con el microscopio electrónico de transmisión. <strong>A</strong>) Partículas con forma de bala dentro de vesículas membranosas en el núcleo celular; <strong>B</strong>) Detalle de las partículas vistas en el espacio perinuclear;<strong> C</strong>). Detalle de las partículas virales dentro de las vesículas membranosas dispersas en el núcleo. C= citoplasma, M= mitocondria, N= núcleo, Nu= nucleolo, inm= membrana nuclear interna, mv= vesículas membranosas llenas de partículas virales, onm= membrana nuclear externa, vp= partículas virales.
Figura 2. Núcleo de una célula de parénquima de una planta sintomática de Carica papaya con la enfermedad de "pecíolo rayado" observada con el microscopio electrónico de transmisión. A) Partículas con forma de bala dentro de vesículas membranosas en el núcleo celular; B) Detalle de las partículas vistas en el espacio perinuclear; C). Detalle de las partículas virales dentro de las vesículas membranosas dispersas en el núcleo. C= citoplasma, M= mitocondria, N= núcleo, Nu= nucleolo, inm= membrana nuclear interna, mv= vesículas membranosas llenas de partículas virales, onm= membrana nuclear externa, vp= partículas virales.
Figura 3. Árbol filogenético construido con las secuencias parciales (900 nt) de la ARN polimerasa dependiente del ARN viral (gen L) de un alphanucleorhabdovirus tentativo obtenido de <em>Carica papaya</em> en Costa Rica (GB Acc. No. PX637683 a PX637686) junto con 31 diferentes rhabdovirus de diferentes plantas (34 secuencias) y el virus Farmington (GB Acc. No. KC602379) como grupo externo, todas ellas recuperadas del GenBank. Éstas se alinearon con el algoritmo ClustalW utilizando BioEdit v.7.7.1, y la filogenia se infirió mediante el método de Máxima Verosimilitud en Mega 12 (modelo "General de Tiempo Reversible" (GTR) con una distribución gamma de tasas de sustitución con sitios invariantes) y un "Bootstrap" de 1000 réplicas.
Figura 3. Árbol filogenético construido con las secuencias parciales (900 nt) de la ARN polimerasa dependiente del ARN viral (gen L) de un alphanucleorhabdovirus tentativo obtenido de Carica papaya en Costa Rica (GB Acc. No. PX637683 a PX637686) junto con 31 diferentes rhabdovirus de diferentes plantas (34 secuencias) y el virus Farmington (GB Acc. No. KC602379) como grupo externo, todas ellas recuperadas del GenBank. Éstas se alinearon con el algoritmo ClustalW utilizando BioEdit v.7.7.1, y la filogenia se infirió mediante el método de Máxima Verosimilitud en Mega 12 (modelo "General de Tiempo Reversible" (GTR) con una distribución gamma de tasas de sustitución con sitios invariantes) y un "Bootstrap" de 1000 réplicas.
  • Vol. 2026, 44(2)
  • Nota Fitopatológica

Potencial de Tortistilus wickhami en transmisión de grapevine red blotch virus (Grablovirus vitis, Geminiviridae) en Baja California, México

PorCynthia Ford Villalón, David Schneider, Idalia Montesinos Solano, Jimena Carrillo Tripp*

Recibido: 13/diciembre/2025 – Publicado: 23/abril/2026
DOI: https://doi.org/10.18781/R.MEX.FIT.2512-4

Resumen Antecedentes/Objetivo. El virus de la mancha roja de la vid, GRBV (Grablovirus vitis) afecta el cultivo de vid (Vitis vinifera) causando pérdidas económicas significativas. En México, donde el GRBV se ha reportado en regiones vitivinícolas como Baja California, la información sobre los posibles vectores de GRBV es limitada. Aunque el periquito tricornudo de la alfalfa (Spissistilus festinus) es un vector confirmado en los Estados Unidos de América, el papel de otros membrácidos en viñedos a nivel global aún no está claro. Recientemente, el membrácido neártico (Tortistilus wickhami) ha sido reportado en Baja California, lo que motivó este estudio para evaluar su potencial para adquirir y transmitir el GRBV.

Desarrollo experimental. Entre febrero y noviembre de 2023, se recolectaron adultos del membrácido neártico en 20 viñedos del Valle de Guadalupe, Baja California. Un total de 30 individuos fue analizado por PCR en tiempo real para detectar GRBV. En mayo, 2024, se recolectaron 17 individuos adicionales que fueron utilizados en ensayos de transmisión, con un periodo de acceso a la adquisición de hasta cuatro días en hojas de vid (cv. Cabernet Sauvignon) infectadas con GRBV, seguido de un periodo de acceso a la inoculación de hasta 9 días en hojas libres de virus. Los insectos y las hojas receptoras fueron analizados por PCR en tiempo real para detectar GRBV.

Resultados. El virus GRBV fue detectado en 6.7 % (2/30) de los individuos colectados en 2023, los cuales provenían exclusivamente de viñedos previamente confirmados como positivos a GRBV. En los ensayos de transmisión, el 53 % (9/17) de los insectos adquirieron partículas virales tras alimentarse de hojas infectadas; sin embargo, no hubo infección detectable en ninguna de las hojas receptoras.

Conclusión. Este estudio demuestra que el membrácido neártico, un insecto filogenéticamente cercano y morfológicamente similar al periquito tricornudo de la alfalfa (vector confirmado de GRBV), fue capaz de adquirir el virus tanto en condiciones de campo como en laboratorio; no obstante, bajo las condiciones experimentales de laboratorio probadas, no se demostró la transmisión a plantas receptoras.

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Cuadro 1. Identificación taxonómica de membrácidos colectados en el estudio de campo, y detección molecular de GRBV.
Cuadro 1. Identificación taxonómica de membrácidos colectados en el estudio de campo, y detección molecular de GRBV.
Cuadro 2. Resultados del ensayo de transmisión de GRBV (<em>Grablovirus vitis</em>) por adultos del membrácido neártico.
Cuadro 2. Resultados del ensayo de transmisión de GRBV (Grablovirus vitis) por adultos del membrácido neártico.
Figura 1. Representación esquemática del ensayo de transmisión de GRBV. Los insectos fueron inicialmente expuestos a hojas escindidas de una vid donadora infectada con GRBV y posteriormente transferidos a hojas escindidas receptoras de vides libres de GRBV para evaluar la posible transmisión del virus. Las hojas individuales se mantuvieron en agua. Las líneas discontinuas indican la remoción de los insectos muertos del interior de la jaula para la detección de GRBV al final del ensayo. La figura fue elaborada utilizando algunos elementos de BioRender.
Figura 1. Representación esquemática del ensayo de transmisión de GRBV. Los insectos fueron inicialmente expuestos a hojas escindidas de una vid donadora infectada con GRBV y posteriormente transferidos a hojas escindidas receptoras de vides libres de GRBV para evaluar la posible transmisión del virus. Las hojas individuales se mantuvieron en agua. Las líneas discontinuas indican la remoción de los insectos muertos del interior de la jaula para la detección de GRBV al final del ensayo. La figura fue elaborada utilizando algunos elementos de BioRender.
Figura 2. Ensayo de transmisión. A) Ejemplo de adultos del membrácido neártico recolectados manualmente en un viñedo, utilizados en el ensayo de transmisión. Crédito de la fotografía: Kyara Acosta Ramos. B) Vista interna de una jaula durante la fase de adquisición de partículas virales. El diseño de la jaula facilitó la interacción insecto–hoja. Una porción de los pecíolos se mantuvo sumergida en agua estéril dentro de viales de 2 mL sellados con parafilm, lo que permitió mantener la hoja en posición vertical. C) Marca en forma de anillo en el pecíolo de una hoja receptora, causada por daño mecánico tras la alimentación de un membrácido neártico.
Figura 2. Ensayo de transmisión. A) Ejemplo de adultos del membrácido neártico recolectados manualmente en un viñedo, utilizados en el ensayo de transmisión. Crédito de la fotografía: Kyara Acosta Ramos. B) Vista interna de una jaula durante la fase de adquisición de partículas virales. El diseño de la jaula facilitó la interacción insecto–hoja. Una porción de los pecíolos se mantuvo sumergida en agua estéril dentro de viales de 2 mL sellados con parafilm, lo que permitió mantener la hoja en posición vertical. C) Marca en forma de anillo en el pecíolo de una hoja receptora, causada por daño mecánico tras la alimentación de un membrácido neártico.
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