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Reducción de la marchitez del chile: sinergia de los hongos micorrízicos arbusculares y nanopartículas de plata
por Hilda Karina Sáenz Hidalgo, Esteban Sánchez Chávez, Nuvia Orduño Cruz, Mahendra Rai, Víctor Olalde Portugal, Graciela Dolores Ávila Quezada*
*Autor de Correspondencia.
Recibido: 17/junio/2024 – Publicado:
13/diciembre/2024
DOI:
https://doi.org/10.18781/R.MEX.FIT.2024-8
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Resumen Antecedentes/Objetivo.El cultivo de chile chilaca (Capsicum annuum) es seriamente afectado por el ataque del oomiceto Phytophthora capsici causante de la marchitez del chile. Los métodos actuales para control de esta enfermedad son ineficientes, por lo que la búsqueda de alternativas más respetuosas con el medio ambiente es de gran importancia. El objetivo de esta investigación fue evaluar el efecto de los hongos micorrízicos arbusculares (HMA) y nanopartículas de plata (AgNPs) para tratar de reducir o postergar la marchitez del chile por P. capsici.
Materiales y Métodos. Se midieron parámetros de crecimiento en plantas de chile inoculadas y sin inocular con HMA de un consorcio comercial TM-73 (Biotecnología Microbiana) y se evaluó el efecto protector de los HMA y AgNPs (NanoID®) contra P. capsici utilizando una escala de severidad para síntomas de marchitez. La respuesta de la planta a la infección del patógeno se evaluó midiendo las actividades de enzimas antioxidantes: PER, SOD, CAT y H2O2.
Resultados. Los resultados indicaron que la aplicación de HMA mejoró los parámetros de crecimiento del cultivo de chile chilaca, mientras que la interacción planta-patógeno indujo una respuesta enzimática antioxidante. Los HMA mantuvieron los síntomas de marchitez en o por debajo del 80%, evitando la muerte de la planta. Mientras que las AgNPs (50ppm) retrasaron la mortalidad de las plantas en comparación con el tratamiento control.
Conclusión. El uso combinado de HMA y AgNPs abre opciones para futuras investigaciones en el manejo de enfermedades del chile.
Palabras clave: Actividad antifúngica, actividad enzimática, estrés oxidativo, marchitez, nanotecnología
Figura 1. Estructuras micorrízicas en raíces de chile chilaca inoculadas con HMA: A, B, C) Hifas (H) y Vesículas (V), d) Arbúsculos (A).
Figura 2. Porcentaje de severidad de la enfermedad causada por P. capsici en chile chilaca. La severidad se evaluó con una escala, durante 12 días después de la inoculación del patógeno.
Figura 3. Comparación de medias del área bajo la curva de la escala de síntomas de severidad de la enfermedad causados por P. capsici en chile chilaca. Error estándar 5%. Letras diferentes en cada columna indican una diferencia significativa (p ≤0.05).
Figura 4. Actividad de Superoxido dismutasa (SOD) en plantas de chile chilaca inoculadas con P. capsici tratadas con HMA y AgNPs.
Figura 5. Concentración de H2O2 en plantas de chile chilaca inoculadas con P. capsici tratadas con HMA y Ag-NPs.
Figura 6. Actividad de catalasa (CAT) en plantas de chile chilaca inoculadas con P. capsici tratadas con HMA y AgNPs.
Figura 7. Actividad de peroxidasa (PER) en plantas de chile chilaca inoculadas con P. capsici tratadas con HMA y AgNPs.
Figura 8. Efecto en la actividad enzimática en chile chilaca en plantas inoculadas con P. capsici. Superóxido Dismutasa (SOD), Catalasa (CAT), Peroxidasa (PER).
Cuadro 1. Escala de severidad de marchitez por P. capsici en C. annuum.
Cuadro 2. Efecto de HMA en el desarrollo de plantas de chile chilaca (Capsicum annuum).
