RMF Logo

Filtros de Contribuciones

Buscar Contribución:

Búsquedas previas al 2024 ver Archivo (2000-2023)
  • Vol. 2026, 44(1)
  • Nota Fitopatológica

Estudio comparativo in vitro e in vivo de la antracnosis en papaya (Carica papaya) causada por Colletotrichum gloeosporioides y Colletotrichum truncatum

por Yuridia Rodríguez González, Ernesto Castañeda Hidalgo*, Celerino Robles, Gisela Margarita Santiago Martínez, Verónica Martínez Gallegos, Salvador Lozano Trejo

*Autor de Correspondencia.

Recibido: 23/septiembre/2025 – Publicado: 16/diciembre/2025
DOI: https://doi.org/10.18781/R.MEX.FIT.2509-3

  • PDF
  • HTML
  • XML

Resumen Antecedentes/Objetivo. Mundialmente, México es el principal exportador de papaya fresca, donde Oaxaca es el mayor productor nacional. Sin embargo, la antracnosis, enfermedad causada por especies del complejo Colletotrichum spp., puede llegar a afectar hasta el 40 % de la producción. El objetivo de la investigación fue identificar al agente causal de la antracnosis en localidades productoras de Oaxaca y evaluar la eficacia de diferentes productos (químicos y biológicos) en la reducción de la severidad de esta enfermedad bajo condiciones in vitro e in vivo.

Desarrollo experimental. Se realizó un muestreo de frutos con lesiones de antracnosis en 12 sitios de los municipios de Villa de Tututepec de Melchor Ocampo y Santa María Huazolotitlán, costa de Oaxaca. Los aislamientos se identificaron mediante análisis morfológicos y microcultivos. Tres fungicidas químicos (procloraz, benomilo y azoxystrobin) y tres biológicos (Bacillus subtilis, Trichoderma sp. y Bacillus cereus) fueron evaluados in vitro e in vivo, con un diseño completamente al azar, con comparación de medias Duncan (p ≤ 0.005).

Resultados. Se identificaron Colletotrichum gloeosporioides y C. truncatum asociados a la antracnosis. En las pruebas in vitro, procloraz fue el tratamiento más eficaz, con valores de inhibición de 86.42 % frente a C. truncatum y 48.66 % frente a C. gloeosporioides, alcanzando una efectividad general del 75 %. Asimismo, B. subtilis y Trichoderma sp. mostraron una alta eficacia in vitro (≥ 70 %), evidenciando un potencial de control biológico en condiciones de laboratorio.

Conclusiones. Se confirmaron a C. gloeosporioides (en el 66.7 % de los sitios muestreados) y a C. truncatum (en el 33.3 % de los sitios muestreadas) como causantes de la antracnosis en papaya en la región Costa de Oaxaca. En las pruebas in vivo, procloraz fue el tratamiento más efectivo con 75% de efectividad contra C. truncatum y 50 % contra C. gloeosporioides, Benomilo mostró una efectividad intermedia, con 65 % en C. truncatum y 45 % en C. gloeosporioides, con severidades de 60-73 %. Los tratamientos biológicos mostraron baja efectividad: Trichoderma sp. (35 % y 15 %) y B. subtilis (25 % y 30 %) para C. gloeosporioides y C. truncatum, respectivamente, con severidades elevadas entre 73 y 93 %. B. cereus y azoxystrobin presentaron un comportamiento intermedio, con 30-40 % de efectividad y severidades de 75-86 %. En conjunto, los resultados indican que los fungicidas sistémicos superaron en más del 30-40 % de efectividad a los agentes biológicos, los cuales mostraron controles inferiores al 35 % y severidades mayores al 80 %, confirmando su limitado desempeño en poscosecha.

Palabras clave: Biocontrol, Carica papaya, Colletotrichum spp., Plaguicida sintético

Cuadro 1. Concentraciones evaluadas de fungicidas químicos y agentes biológicos utilizados contra <em>Colletotrichum gloeosporioides</em> y <em>C. truncatum</em> en frutos de papaya.
Cuadro 1. Concentraciones evaluadas de fungicidas químicos y agentes biológicos utilizados contra Colletotrichum gloeosporioides y C. truncatum en frutos de papaya.
Cuadro 2. Escala visual y cuantitativa para la clasificación del daño por antracnosis en frutos de papaya según área de lesión.
Cuadro 2. Escala visual y cuantitativa para la clasificación del daño por antracnosis en frutos de papaya según área de lesión.
Cuadro 3. Análisis de varianza del efecto de diferentes productos sobre las lesiones en frutos de papaya var. Maradol causada por <em>C. truncatum</em> 10 días después de la inoculación.
Cuadro 3. Análisis de varianza del efecto de diferentes productos sobre las lesiones en frutos de papaya var. Maradol causada por C. truncatum 10 días después de la inoculación.
Cuadro 4. Análisis de varianza del efecto de diferentes productos químicos y biológicos sobre las lesiones en frutos de papaya var. Maradol causada por <em>C. gloeosporioides</em>, a 10 días después de la inoculación.
Cuadro 4. Análisis de varianza del efecto de diferentes productos químicos y biológicos sobre las lesiones en frutos de papaya var. Maradol causada por C. gloeosporioides, a 10 días después de la inoculación.
Cuadro 5. Efecto de diferentes productos químicos y biológicos sobre las lesiones en frutos de papaya var. Maradol causada por <em>C. truncatum</em> a 10 días después de la inoculación.
Cuadro 5. Efecto de diferentes productos químicos y biológicos sobre las lesiones en frutos de papaya var. Maradol causada por C. truncatum a 10 días después de la inoculación.
Cuadro 6. Efecto de diferentes productos sobre las lesiones en frutos de papaya var. Maradol causada por <em>C. gloeosporioides</em> a 10 días después de la inoculación.
Cuadro 6. Efecto de diferentes productos sobre las lesiones en frutos de papaya var. Maradol causada por C. gloeosporioides a 10 días después de la inoculación.
Cuadro 7. Efectividad y severidad en frutos de papaya var. Maradol de seis fungicidas después de siete días de inoculación con las especies de <em>C. truncatum</em> y <em>C. gloeosporioides</em>.
Cuadro 7. Efectividad y severidad en frutos de papaya var. Maradol de seis fungicidas después de siete días de inoculación con las especies de C. truncatum y C. gloeosporioides.
Figura 1. Características morfológicas de <em>Colletetrichum gloeosporioides</em> (1A) y <em>C. truncatum</em> (1B) aisladas de frutos de papaya.
Figura 1. Características morfológicas de Colletetrichum gloeosporioides (1A) y C. truncatum (1B) aisladas de frutos de papaya.
Figura 2. Diámetro de inhibición del crecimiento de siete días de <em>C. gloeosporioides</em> (A) y <em>C. truncatum</em> (B) con tres dosis y seis fungicidas por la técnica de difusión en disco. Dosis evaluadas: procloraz, A= Alta 3 g L<sup>-1</sup>; M= Media 2 g L<sup>-1</sup>; B= Baja 1 g L<sup>-1</sup>; benomilo, A= Alta 0.6 g L<sup>-1</sup>; M= Media 0.4 g L<sup>-1</sup>; B= Baja 0.3 g L<sup>-1</sup>; azoxytrobin, A= Alta 0.3 g L<sup>-1</sup>; M= Media 0.2 g L<sup>-1</sup>; B= Baja 0.1 g L<sup>-1</sup>; B. subtilis, A= Alta 4 g L<sup>-1</sup>; M= Media 3 g L<sup>-1</sup>; B= Baja 2 g L<sup>-1</sup>; <em>Trichoderma</em> spp., A= Alta 1.5 g L<sup>-1</sup>; M= Media 1.2 g L<sup>-1</sup>; B= Baja 1 g L<sup>-1</sup>; <em>B. cereus</em> 1.5 x 108 UFC mL<sup>-1</sup>. Las medias con letras iguales en la especie son estadísticamente iguales (Duncan, 0.05).
Figura 2. Diámetro de inhibición del crecimiento de siete días de C. gloeosporioides (A) y C. truncatum (B) con tres dosis y seis fungicidas por la técnica de difusión en disco. Dosis evaluadas: procloraz, A= Alta 3 g L-1; M= Media 2 g L-1; B= Baja 1 g L-1; benomilo, A= Alta 0.6 g L-1; M= Media 0.4 g L-1; B= Baja 0.3 g L-1; azoxytrobin, A= Alta 0.3 g L-1; M= Media 0.2 g L-1; B= Baja 0.1 g L-1; B. subtilis, A= Alta 4 g L-1; M= Media 3 g L-1; B= Baja 2 g L-1; Trichoderma spp., A= Alta 1.5 g L-1; M= Media 1.2 g L-1; B= Baja 1 g L-1; B. cereus 1.5 x 108 UFC mL-1. Las medias con letras iguales en la especie son estadísticamente iguales (Duncan, 0.05).