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  • Vol. 2026, 44(1)
  • Artículo Científico

Etiología de la pudrición del tronco del coco Enano Verde del Brasil y eficacia in vitro de fungicidas en Tabasco, México

por Nitzarindany Acencio Castillo, Magdiel Torres-de la Cruz*, Carlos F Ortiz García, Cristian Nava Díaz, Ángel F Huamán Pilco, Manuel Pérez-de la Cruz, Lenin Arias Rodríguez, Ramón A Castillo González

*Autor de Correspondencia.

Recibido: 16/diciembre/2024 – Publicado: 11/diciembre/2025
DOI: https://doi.org/10.18781/R.MEX.FIT.2412-1

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    • Acencio-Castillo N, Torres-de la M, Ortiz-García CF, Nava-Díaz C, Huamán-Pilco ÁF, Pérez-de la M, Arias-Rodríguez L, Castillo-González RA. 2026. Etiología de la pudrición del tronco del coco Enano Verde del Brasil y eficacia in vitro de fungicidas en Tabasco, México. Revista Mexicana de Fitopatología 44(1):103. https://doi.org/10.18781/R.MEX.FIT.2412-1
    • Acencio-Castillo, N, Torres-de la, M, Ortiz-García, CF, Nava-Díaz, C, Huamán-Pilco, ÁF, Pérez-de la, M, Arias-Rodríguez, L y Castillo-González, RA (2026). Etiología de la pudrición del tronco del coco Enano Verde del Brasil y eficacia in vitro de fungicidas en Tabasco, México. Revista Mexicana de Fitopatología 44(1):103. https://doi.org/10.18781/R.MEX.FIT.2412-1
    • Nitzarindany Acencio-Castillo, Magdiel Torres-de la, Carlos Ortiz-GarcíaF, Cristian Nava-Díaz, Ángel Huamán-PilcoF, Manuel Pérez-de la, Lenin Arias-Rodríguez y Ramón Castillo-GonzálezA. 2026. Etiología de la pudrición del tronco del coco Enano Verde del Brasil y eficacia in vitro de fungicidas en Tabasco, México. Revista Mexicana de Fitopatología 44(1):103. https://doi.org/10.18781/R.MEX.FIT.2412-1
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Resumen Antecedentes/Objetivo. El cocotero (Cocos nucifera) es un cultivo importante en México. En Tabasco, la variedad “Enano Verde del Brasil” (CEVB) se ha introducido para la producción de fruto verde para agua; sin embargo, han presentado patologías de etiologías desconocidas. El objetivo fue identificar los hongos asociados a la pudrición del tronco del coco CEVB, en Tabasco, México, y realizar una evaluación comparativa in vitro de la eficacia de fungicidas sistémicos y de contacto.

Materiales y Métodos. A partir de muestras de tronco, cogollo e inflorescencia con necrosis, se realizó el aislamiento de hongos en medio PDA. Los aislamientos fueron caracterizados inicialmente mediante análisis morfológico. Dos de ellos fueron seleccionados para pruebas de patogenicidad sobre plántulas de CEVB e identificados molecularmente mediante el análisis de secuencias parciales del gen ITS (ITS1-5.8S-ITS2 del DNAr nuclear). Además, se realizaron bioensayos in vitro para comparar la eficacia de 10 fungicidas sistémicos y de contacto. Cada fungicida se evaluó a tres concentraciones (alta, recomendada y baja), estimándose su efecto sobre la germinación de esporas (GE) y del crecimiento micelial (CM).

Resultados. Los aislamientos fueron identificados como Thielaviopsis paradoxa. Los ensayos de patogenicidad confirmaron a T. paradoxa como agente causal de necrosis en plántulas. Los fungicidas sistémicos propiconazol, carbendazim y tebuconazol, mostraron inhibición completa del CM y de la GE a partir de la dosis más baja evaluada (0.45x103 1x103 y 0.5x103 ppm, respectivamente). Los fungicidas protectantes hidróxido de cobre y captan inhibieron completamente la GE a la dosis más baja (1x103 y 1.5x103 ppm, respectivamente), aunque sólo alcanzaron un 80 % de inhibición del CM.

Conclusión. Se reporta por primera vez a T. paradoxa sobre el CEVB en México. Este estudio amplía el conocimiento sobre los hongos que afectan al CEVB en Tabasco y proporciona una base para la selección de fungicidas promisorios, cuya eficacia deberá validarse en estudios posteriores bajo condiciones de campo.

Palabras clave: Carbendazim, Cocos nucifera, Propiconazol, Tebuconazol, Thielaviopsis paradoxa

Cuadro 1. Fungicidas y dosis evaluadas <em>in vitro</em> sobre <em>Thielaviopsis paradoxa</em>.
Cuadro 1. Fungicidas y dosis evaluadas in vitro sobre Thielaviopsis paradoxa.
Cuadro 2. Efectividad de fungicidas sistémicos y de contacto sobre el crecimiento micelial y germinación de conidios de dos cepas (M2-18 y M3-16) de <em>Thielaviopsis paradoxa</em> aislados de <em>Cocos nucifera</em>, “Enano Verde del Brasil”, en la costa de Tabasco, México.
Cuadro 2. Efectividad de fungicidas sistémicos y de contacto sobre el crecimiento micelial y germinación de conidios de dos cepas (M2-18 y M3-16) de Thielaviopsis paradoxa aislados de Cocos nucifera, “Enano Verde del Brasil”, en la costa de Tabasco, México.
Figura 1. Síntomas asociados a la pudrición del tronco de <em>Cocos nucifera</em> “Enano Verde del Brasil”, en la costa de Tabasco, México. <strong>A</strong>) Necrosis en la vaina de las hojas basales, en la zona de inserción al tronco; <strong>B</strong>) Necrosis en el punto de inserción foliar en el estípite; <strong>C</strong>) Progresión de la necrosis hacia el interior del tronco; <strong>D</strong>) Necrosis de la hoja flecha; <strong>E</strong>) Necrosis en espatas e inflorescencias; <strong>F</strong>) Hojas marchitas y “falda de hojas” adheridas al tronco; <strong>G</strong>) Colapso de la corona, con hojas terminales aún verdes; <strong>H</strong>) Pudrición descendente del tronco.
Figura 1. Síntomas asociados a la pudrición del tronco de Cocos nucifera “Enano Verde del Brasil”, en la costa de Tabasco, México. A) Necrosis en la vaina de las hojas basales, en la zona de inserción al tronco; B) Necrosis en el punto de inserción foliar en el estípite; C) Progresión de la necrosis hacia el interior del tronco; D) Necrosis de la hoja flecha; E) Necrosis en espatas e inflorescencias; F) Hojas marchitas y “falda de hojas” adheridas al tronco; G) Colapso de la corona, con hojas terminales aún verdes; H) Pudrición descendente del tronco.
Figura 2. Características morfológicas de <em>Thielaviopsis paradoxa</em>. <strong>A</strong>) Colonia de 15 días de crecimiento en medio PDA; <strong>B</strong>) Conidióforos; <strong>C</strong>) Fialoconidios primarios en cadena; <strong>D</strong>, <strong>E</strong>) Fialoconidios primarios y secundarios en cadena; <strong>F</strong>, <strong>G</strong>) Aleuroconidios. Barras de escala: <strong>B</strong>= 20 μm, <strong>C,</strong> <strong>D</strong>, <strong>E</strong>, <strong>F</strong>, <strong>G</strong> = 10 μm.
Figura 2. Características morfológicas de Thielaviopsis paradoxa. A) Colonia de 15 días de crecimiento en medio PDA; B) Conidióforos; C) Fialoconidios primarios en cadena; D, E) Fialoconidios primarios y secundarios en cadena; F, G) Aleuroconidios. Barras de escala: B= 20 μm, C, D, E, F, G = 10 μm.
Figura 3. Árbol filogenético de máxima verosimilitud construido con un conjunto de datos de secuencias parciales del espaciador interno transcrito 1 y 2 que intervienen en la subunidad 5.8S rDNA para los aislamientos M2-18 (número de acceso Genbank: PQ643222) y M3-16 (número de acceso Genbank: PQ643223) de T<em>hielaviopsis paradoxa</em>, obtenidos de muestras de tronco y cogollo de <em>Cocos nucifera</em> “Enano Verde del Brasil”, con pudrición de tronco, en la costa de Tabasco, México. Los datos de otras cepas y especies de <em>Thielaviopsis</em> (<em>Ceratocystis</em>) se obtuvieron del GenBank.
Figura 3. Árbol filogenético de máxima verosimilitud construido con un conjunto de datos de secuencias parciales del espaciador interno transcrito 1 y 2 que intervienen en la subunidad 5.8S rDNA para los aislamientos M2-18 (número de acceso Genbank: PQ643222) y M3-16 (número de acceso Genbank: PQ643223) de Thielaviopsis paradoxa, obtenidos de muestras de tronco y cogollo de Cocos nucifera “Enano Verde del Brasil”, con pudrición de tronco, en la costa de Tabasco, México. Los datos de otras cepas y especies de Thielaviopsis (Ceratocystis) se obtuvieron del GenBank.
Figura 4. Pruebas de patogenicidad en plántulas de coco “Enano Verde del Brasil”. <strong>A</strong>, <strong>B</strong>. Necrosis causada por <em>Thielaviopsis paradoxa</em>, cepas M2-18 y M3-16 respectivamente. <strong>C</strong>. Testigo.
Figura 4. Pruebas de patogenicidad en plántulas de coco “Enano Verde del Brasil”. A, B. Necrosis causada por Thielaviopsis paradoxa, cepas M2-18 y M3-16 respectivamente. C. Testigo.
Figura 5. Efecto <em>in vitro</em> de fungicidas sistémicos y de contacto sobre <em>Thielaviopsis paradoxa</em>. <strong>A</strong>) Medio con propiconazol; <strong>B</strong>) Medio con tiabendazol; <strong>C</strong>) Medio con carbendazim; D) Medio con tebuconazol; <strong>E</strong>) Medio con difenoconazol + cyprodinil; <strong>F</strong>) Medio con mandipropamid + mefenoxam; <strong>G</strong>) Medio con oxicloruro de cobre; <strong>H</strong>) Medio con captan; <strong>I</strong>) Medio con aceite de <em>Melaleuca alternifolia</em>; <strong>J</strong>) Hidróxido de cobre; <strong>K</strong>) Testigo. Números dentro de cada imagen indican la dosis en partes por millón (ppm). Todas las dosis se expresan en unidades de ×10<sup>3</sup>.
Figura 5. Efecto in vitro de fungicidas sistémicos y de contacto sobre Thielaviopsis paradoxa. A) Medio con propiconazol; B) Medio con tiabendazol; C) Medio con carbendazim; D) Medio con tebuconazol; E) Medio con difenoconazol + cyprodinil; F) Medio con mandipropamid + mefenoxam; G) Medio con oxicloruro de cobre; H) Medio con captan; I) Medio con aceite de Melaleuca alternifolia; J) Hidróxido de cobre; K) Testigo. Números dentro de cada imagen indican la dosis en partes por millón (ppm). Todas las dosis se expresan en unidades de ×103.