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Epidemiología de la roya del cafeto bajo el efecto de fungicidas en la Sierra Norte y Nororiental del estado de Puebla. Figura 2 - Temperatura y humedad relativa de Huehuetla, Puebla. Periodo: abril de 2024 a marzo de 2025. La franja gris indica el rango de temperatura óptima para la roya del cafeto (17 a 26 ºC) y la franja verde indica el rango de humedad relativa óptima (80-100 %) reportada por SENASICA (2019) y Parada-Molina <em>et al</em>. (2020).

Figura 2 - Temperatura y humedad relativa de Huehuetla, Puebla. Periodo: abril de 2024 a marzo de 2025. La franja gris indica el rango de temperatura óptima para la roya del cafeto (17 a 26 ºC) y la franja verde indica el rango de humedad relativa óptima (80-100 %) reportada por SENASICA (2019) y Parada-Molina et al. (2020).

Epidemiología de la roya del cafeto bajo el efecto de fungicidas en la Sierra Norte y Nororiental del estado de Puebla. Figura 4 - Efecto de fungicidas sobre la dinámica de la incidencia de la roya (<em>H. vastatrix</em>) en cafeto cultivado en Huehuetla, Ixtepec y Zongozotla, Puebla. A) Lipuntahuaca 1 (Costa Rica 95), B) Lipuntahuaca 2 (Typica), C) Escatachuchut 1 (Costa Rica 95), D) Escatachuchut 2 (Garnica), E) Zongozotla 1 (Marsellesa) y F) Zongozotla 2 (Oro Azteca). Las flechas indican el momento de aplicación de los fungicidas: naranja: Azoxistrobin, gris: <em>M. alternifolia</em> y verde: <em>B. subtilis</em>. El asterisco (*) indica diferencias significativas entre los tratamientos de cada muestreo de acuerdo con la prueba de comparación de medias Tukey.

Figura 4 - Efecto de fungicidas sobre la dinámica de la incidencia de la roya (H. vastatrix) en cafeto cultivado en Huehuetla, Ixtepec y Zongozotla, Puebla. A) Lipuntahuaca 1 (Costa Rica 95), B) Lipuntahuaca 2 (Typica), C) Escatachuchut 1 (Costa Rica 95), D) Escatachuchut 2 (Garnica), E) Zongozotla 1 (Marsellesa) y F) Zongozotla 2 (Oro Azteca). Las flechas indican el momento de aplicación de los fungicidas: naranja: Azoxistrobin, gris: M. alternifolia y verde: B. subtilis. El asterisco (*) indica diferencias significativas entre los tratamientos de cada muestreo de acuerdo con la prueba de comparación de medias Tukey.

Primera detección de bell pepper endornavirus infectando al pimiento morrón en Guanajuato, México. Figura 1 - El árbol filogenético fue construido usando el método de máxima verosimilitud, basado en la secuencia de la poliproteína de bell pepper endornavirus (BPEV, <em>Alphaendornavirus capsici</em>) y de otras secuencias de endornavirus del pimiento morrón disponibles en GenBank. Secuencias de referencia fueron seleccionadas basadas en su anotación como aislados de BPEV y la disponibilidad de sus secuencias. Los análisis fueron realizados usando el modelo de sustitución de nucleótidos correspondientes. Los valores de soporte de bootstrap (1 000 réplicas) están indicados en los nodos, solo los superiores a 50 % son visibles. La secuencia PZ103604 (indicada por una flecha) se agrupa con secuencias estrechamente relacionadas con un alto soporte bootstrap, sugiriendo una relación filogenética cercana. La secuencia DQ399290 (<em>Betaendornavirus</em>) fue utilizada como grupo externo. La barra de escala representa 0.20 sustituciones por sitio.

Figura 1 - El árbol filogenético fue construido usando el método de máxima verosimilitud, basado en la secuencia de la poliproteína de bell pepper endornavirus (BPEV, Alphaendornavirus capsici) y de otras secuencias de endornavirus del pimiento morrón disponibles en GenBank. Secuencias de referencia fueron seleccionadas basadas en su anotación como aislados de BPEV y la disponibilidad de sus secuencias. Los análisis fueron realizados usando el modelo de sustitución de nucleótidos correspondientes. Los valores de soporte de bootstrap (1 000 réplicas) están indicados en los nodos, solo los superiores a 50 % son visibles. La secuencia PZ103604 (indicada por una flecha) se agrupa con secuencias estrechamente relacionadas con un alto soporte bootstrap, sugiriendo una relación filogenética cercana. La secuencia DQ399290 (Betaendornavirus) fue utilizada como grupo externo. La barra de escala representa 0.20 sustituciones por sitio.

Epidemiología de la roya del cafeto bajo el efecto de fungicidas en la Sierra Norte y Nororiental del estado de Puebla. Figura 1 - Dinámica temporal de la severidad de la roya (<em>H. vastatrix</em>) en cafeto cultivado en Huehuetla, Ixtepec y Zongozotla, Puebla sin aplicación de fungicidas. A) Severidad, B) Incidencia. Las líneas representan el desarrollo de la enfermedad a través del tiempo, Costa Rica 95 (azul), Typica (naranja), Costa Rica 95 (gris), Garnica (amarillo), Marsellesa (morado) y Oro Azteca (verde).

Figura 1 - Dinámica temporal de la severidad de la roya (H. vastatrix) en cafeto cultivado en Huehuetla, Ixtepec y Zongozotla, Puebla sin aplicación de fungicidas. A) Severidad, B) Incidencia. Las líneas representan el desarrollo de la enfermedad a través del tiempo, Costa Rica 95 (azul), Typica (naranja), Costa Rica 95 (gris), Garnica (amarillo), Marsellesa (morado) y Oro Azteca (verde).

Uso de <em>Purpureocillium lilacinum</em> MTL01 y <em>Bacillus velezensis</em> 83 para reducir el agallamiento por <em>Meloidogyne enterolobii</em> y mejorar la floración en tomate. Figura 2 - Población de <em>M. enterolobii</em> establecida en el laboratorio. <strong>A</strong>) Raíces agalladas después de la propagación de <em>M. enterolobii</em> a los 90 días posteriores a la inoculación con J2s, en una planta de tomate de 4 meses de edad. <strong>B</strong>) Agalla con una masa de huevos expuesta (flecha blanca) y huevos (flecha amarilla). <strong>C</strong>) Cuerpo de hembra con forma de pera (flecha superior) y masa de huevos (flecha inferior). <strong>D</strong>) Nematodos de estadio J2 eclosionados en agua.

Figura 2 - Población de M. enterolobii establecida en el laboratorio. A) Raíces agalladas después de la propagación de M. enterolobii a los 90 días posteriores a la inoculación con J2s, en una planta de tomate de 4 meses de edad. B) Agalla con una masa de huevos expuesta (flecha blanca) y huevos (flecha amarilla). C) Cuerpo de hembra con forma de pera (flecha superior) y masa de huevos (flecha inferior). D) Nematodos de estadio J2 eclosionados en agua.

<em>Bipolaris oryzae</em> agente asociado a la mancha foliar en <em>Cocos nucifera</em> híbrido “Enano Verde de Brasil”. Figura 4 - Crecimiento de <em>Bipolaris oryzae</em> a cinco días después de la inoculación en PDA modificado con diferentes dosis de fungicidas biológicos comerciales.

Figura 4 - Crecimiento de Bipolaris oryzae a cinco días después de la inoculación en PDA modificado con diferentes dosis de fungicidas biológicos comerciales.

Virus y viroides en jitomate (<em>Solanum lycopersicum</em>) y rizobacterias promotoras de crecimiento vegetal como alternativa de manejo. Figura 1 - Estados de la República Mexicana donde se detectaron virus y viroides en jitomate (Ver Cuadro 1)

Figura 1 - Estados de la República Mexicana donde se detectaron virus y viroides en jitomate (Ver Cuadro 1)

Hongos asociados al tizón foliar del trigo y su control biológico. Figura 7 - Confrontación dual con <em>Fusarium</em> aislamiento 1. A) Distribución de los discos de <em>Fusarium</em>. B) Crecimiento de la colonia testigo de <em>Fusarium</em> aislamiento 1. C) <em>Fusarium</em> aislamiento 1 y morfotipo M1BM1. D) <em>Fusarium</em> aislamiento 1 y morfotipo M1B4. G) <em>Fusarium</em> aislamiento 1 y morfotipo M2B60. H) <em>Fusarium</em> aislamiento 1 y morfotipo M2B74. I). Crecimiento micelial de testigo <em>Fusarium</em> aislamiento 1.

Figura 7 - Confrontación dual con Fusarium aislamiento 1. A) Distribución de los discos de Fusarium. B) Crecimiento de la colonia testigo de Fusarium aislamiento 1. C) Fusarium aislamiento 1 y morfotipo M1BM1. D) Fusarium aislamiento 1 y morfotipo M1B4. G) Fusarium aislamiento 1 y morfotipo M2B60. H) Fusarium aislamiento 1 y morfotipo M2B74. I). Crecimiento micelial de testigo Fusarium aislamiento 1.

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Vol. 2023, 41(3)
Artículo Científico

Biopelícula de algas epífitas y hongos en plantaciones forestales de pinabete (Abies guatemalensis) en Guatemala

PorAndrés Villalobos*, Ana Lucía Dubón , María Renée Álvarez , Sergio Osorio , Margarita Palmieri

Recibido: 31/enero/2022 – Publicado: 23/agosto/2023
DOI: https://doi.org/10.18781/R.MEX.FIT.2301-2

Resumen En los últimos años se ha reportado la incidencia de una nueva plaga en las plantaciones de pinabete (Abies guatemalensis), una biopelícula de microorganismos conocida como el “alga verde”. El objetivo de esta investigación fue identificar las algas y hongos que conforman la biopelícula que crece sobre las hojas del pinabete. Se recolectaron muestras de hojas en tres localidades con presencia de la biopelícula, y se aislaron las algas y hongos presentes en estas. Se realizó el cultivo in vitro de los microorganismos y se identificaron por medio de microscopía de luz, en el caso de los hongos, también se realizó una extracción de ADN y una amplificación de la región ITS. A partir de 120 hojas colectadas de 15 árboles se identificaron cuatro algas de los géneros Desmococcus, Klebsormidium y la clase Trebouxiophyceae, así como 11 hongos de los géneros Alternaria, Aspergillus, Fusarium, Mucor, Trichoderma y Ulocladium. La biopelícula que afecta a las plantaciones del pinabete en Guatemala está compuesta por varias especies de algas epifitas, hongos, las cuales pueden variar de acuerdo con la localidad. Aún es necesario abordar los factores que afectan la riqueza de microorganismos de la biopelícula y su relación simbiótica.

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Vol. 2023, 41(3)
Carta al Editor

Multidisciplina, componente fundamental de la innovación en el control biológico de fitopatógenos

PorEnrique Galindo

Recibido: 03/agosto/2023 – Publicado: 24/agosto/2023
DOI: https://doi.org/10.18781/R.MEX.FIT.2308-1

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